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January 9, 2018 | Author: Anonymous | Category: Science, Biologie, Botanique, Plante
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F TC/50/30 ORIGINAL : anglais DATE : 21 février 2014

UNION INTERNATIONALE POUR LA PROTECTION DES OBTENTIONS VÉGÉTALES Genève

COMITE TECHNIQUE Cinquantième session Genève, 7-9 avril 2014

RÉVISION PARTIELLE DES PRINCIPES DIRECTEURS D’EXAMEN DU CONCOMBRE (DOCUMENT TG/61/7) Document établi par le Bureau de l’Union Avertissement : le présent document ne représente pas les principes ou les orientations de l’UPOV

1. À sa quarante-septième session tenue à Nagasaki (Japon), du 20 au 24 mai 2013, le Groupe de travail technique sur les plantes potagères (TWV) a examiné la révision partielle des principes directeurs d’examen du concombre sur la base du document TG/61/7 (voir le paragraphe 72 du document TWV/47/34 “Report”). 2.

La structure du présent document est la suivante : PROPOSITION DE REVISION DES CARACTERES DE GROUPEMENT DANS LE CHAPITRE 5.3 ........................................ 1 PROPOSITION DE REVISION DU CHAPITRE 7 : TABLEAU DES CARACTERES ............................................................. 1 Proposition de révision des caractères 44 à 50 ............................................................................................................. 1

PROPOSITION DE REVISION DU CHAPITRE 8 : EXPLICATIONS DU TABLEAU DES CARACTERES................................... 5 Proposition visant à inclure un format révisé pour les caractères de résistance aux maladies sous la section 8.2 ............................................................................................................................................................... 5

PROPOSITION DE REVISION DU CHAPITRE 10 “QUESTIONNAIRE TECHNIQUE”........................................................32 Section 5 : Caractères du tableau des caractères qui figurent dans le questionnaire technique ................................. 32 Section 7 : Ajout de nouveaux caractères sous 7.3.1 .................................................................................................. 33

3.

Les révisions proposées sont présentées dans l’annexe du présent document.

[L’annexe suit]

TC/50/30 ANNEXE Proposition de révision des caractères de groupement dans le chapitre 5.3 Libellé actuel : a) b) c) c) d) e)

Cotylédon : amertume (caractère 1) Plante : expression du sexe (caractère 13) Ovaire : couleur de la pilosité (caractère 15) Parthénocarpie (caractère 16) Fruit : longueur (caractère 17) Fruit : couleur de fond de l’épiderme à maturité commerciale (caractère 25)

Nouveau libellé proposé : a) b) c) cd) de) ef) g) h) i) j) k)

Cotylédon : amertume (caractère 1) Plante : expression du sexe (caractère 13) Ovaire : couleur de la pilosité l’ornementation 1 (caractère 15) Parthénocarpie (caractère 16) Fruit : longueur (caractère 17) Fruit : couleur de fond de l’épiderme à maturité commerciale (caractère 25) Résistance à Cladosporium cucumerinum (Ccu) (caractère 44) Résistance au virus de la mosaïque du concombre (CMV) (caractère 45) Résistance à l’oïdium (Podosphaera xanthii) (Px) (caractère 46) Résistance à la pourriture corynespora et à la septoriose (Corynespora cassiicola) (Cca) (caractère 48) Résistance au virus du jaunissement des nervures du concombre (CVYV) (caractère 49)

Proposition de révision du chapitre 7 : Tableau des caractères Proposition de révision des caractères 44 à 50 Libellé actuel : 44. (+)

Resistance to Cladosporium cucumerinum (Ccu)

Résistance à Cladosporium cucumerinum (Ccu)

Resistenz gegen Cladosporium cucumerinum (Ccu)

Resistencia a la Cladosporium cucumerinum (Ccu)

QL

absent

absente

fehlend

ausente

Pepinex 69

1

present

présente

vorhanden

presente

Maketmore 76

9

Nouveau libellé proposé : 44. (+)

Resistance to Cladosporium cucumerinum (Ccu)

Résistance à Cladosporium cucumerinum (Ccu)

Resistenz gegen Cladosporium cucumerinum (Ccu)

Resistencia a la Cladosporium cucumerinum (Ccu)

QL

absent

absente

fehlend

ausente

Cherubino, Frontera,Pepinex 69

1

present

présente

vorhanden

presente

Corona, Marketmore 76, Sheila

9

1

Le remplacement de “la pilosité” par “l’ornementation” sera effectué dans le document TG/60/7 Rev. aux endroits correspondants.

TC/50/30 Annexe, page 2 Libellé actuel : 45. (+)

Resistance to Cucumis Résistance au virus Mosaic Virus (CMV) de la mosaïque du concombre

Resistenz gegen Gurkenmosaikvirus (CMV)

Resistencia al virus del mosaico del pepino (CMV)

QN

susceptible

sensibilité

anfällig

susceptible

Gele Tros

1

moderately resistant

résistance moyenne

mäßig resistent

intermedia

Gardon

2

highly resistant

forte résistance

hochresistent

alta

Hokus, Naf

3

Nouveau libellé proposé : 45. (+)

Resistance to Cucumber mosaic virus(CMV)

Résistance au virus de la mosaïque du concombre (CMV)

Resistenz gegen Gurkenmosaikvirus (CMV)

Resistencia al virus del mosaico del pepino (CMV)

QN

susceptible

sensible

anfällig

susceptible

Bosporus, Corona, Ventura

1

moderately resistant

moyennement résistant

mäßig resistent

intermedia

Capra,Gardon, Verdon

2

highly resistant

hautement résistant

hochresistent

alta

Naf, Picolino

3

Libellé actuel : 46. (+) QN

Resistance to powdery Résistance à l’oïdium Resistenz gegen Resistencia al mildiú mildew (Podosphaera (Podosphaera xanthii) Echten Mehltau blanco (Podosphaera xanthii) (Sf) (Sf) (Podosphaera xanthii) xanthii) (Sf) (Sf) susceptible

sensibilité

anfällig

susceptible

Corona

1

moderately resistant

résistance moyenne

mäßig resistent

intermedia

Flamingo

2

highly resistant

forte résistance

hochresistent

alta

Cordoba

3

Nouveau libellé proposé : 46. (+) QN

Resistance to Powdery Résistance à l’oïdium Resistenz gegen Resistencia al oidio mildew (Podosphaera (Podosphaera xanthii) Echten Mehltau (Podosphaera xanthii) xanthii) (Px) (Px) (Podosphaera xanthii) (Px) (Px) susceptible

sensible

anfällig

susceptible

Corona, Ventura

1

moderately resistant

moyennement résistant

mäßig resistent

intermedia

Flamingo

2

highly resistant

hautement résistant

hochresistent

alta

Aramon, Bella,Cordoba

3

TC/50/30 Annexe, page 3 Libellé actuel : 47. (+) QN

Resistance to downy mildew (Pseudoperonospora cubensis) (Pc)

Résistance au mildiou Resistenz gegen (Pseudoperonospora Falschen Mehltau cubensis) (Pc) (Pseudoperonospora cubensis) (Pc)

Resistencia al mildiú velloso del pepino (Pseudoperonospora cubensis (Pc))

susceptible

sensibilité

anfällig

susceptible

Pepinex 69, SMR 58

1

moderately resistant

résistance moyenne

mäßig resistent

intermedia

Poinsett

2

highly resistant

forte résistance

hochresistent

alta

3

Nouveau libellé proposé : 47.

Resistance to Downy mildew (Pseudoperonospora cubensis) (Pcu)

Résistance au mildiou Resistenz gegen (Pseudoperonospora Falschen Mehltau cubensis) (Pcu) (Pseudoperonospora cubensis) (Pcu)

Resistencia al mildiú velloso del pepino (Pseudoperonospora cubensis (Pcu)

absent

absente

fehlend

ausente

Pepinex 69, Wisconsin

1

present

présente

vorhanden

presente

Poinsett 76

9

(+)

Resistance to Corynespora blight and target leaf spot (Corynespora cassiicola) (Cca)

Résistance à la pourriture corynespora et à la septoriose (Corynespora cassiicola) (Cca)

Resistenz gegen CorynesporaBlattfleckenkrank-heit (Corynespora cassiicola) (Cca)

Resistencia a la mancha foliar (Corynespora cassiicola) (Cca)

QL

absent

absente

fehlend

ausente

Cerrucho, Goya, Pepinova

1

present

présente

vorhanden

presente

Corona, Cumlaude, Edona

9

(+) QL

Libellé actuel : 48.

Nouveau libellé proposé : 48. (+)

Resistance to Corynespora blight and target leaf spot (Corynespora cassiicola) (Cca)

Résistance à la pourriture corynespora et à la septoriose (Corynespora cassiicola) (Cca)

Resistenzgegen CorynesporaBlattfleckenkrankheit (Corynespora cassiicola) (Cca)

Resistencia a la mancha foliar (Corynespora cassiicola) (Cca)

QL

absent

absente

fehlend

ausente

Bodega

1

present

présente

vorhanden

presente

Corona, Cumlaude

9

TC/50/30 Annexe, page 4 Libellé actuel : 49. (+) QL

Resistance to Résistance au virus Cucumber Vein du jaunissement Yellowing Virus (CVYV) des nervures du concombre

Resistenz gegen Resistencia al virus de Cucumber Vein las venas amarillas del Yellowing Virus (CVYV) pepino (CVYV)

absent

absente

fehlend

ausente

Corona

1

present

présente

vorhanden

presente

Tornac

9

Nouveau libellé proposé : 49. (+) QL

Resistance to Résistance au virus Resistenz gegen Resistencia al virus de du jaunissement las venas amarillas del Cucumber vein Cucumber vein yellowing virus (CVYV) des nervures yellowing virus(CVYV) pepino (CVYV) du concombre (CVYV) absent

absente

fehlend

ausente

Corinda,Corona, Ventura

1

present

présente

vorhanden

presente

Dina, Summerstar, Tornac

9

Libellé actuel : 50. (+)

Resistance to Zucchini Résistance au virus de Resistenz gegen Yellow Mosaic Virus la mosaïque jaune de Zucchinigelb(ZYMV) la courgette mosaikvirus (ZYMV)

Resistencia al virus del mosaico amarillo del calabacín (ZYMV)

QL

absent

absente

fehlend

ausente

Corona

1

present

présente

vorhanden

presente

Dina

9

Nouveau libellé proposé : 50. (+)

Resistance to Zucchini Résistance au virus de Resistenz gegen la mosaïque jaune de Zucchinigelbyellow mosaic virus (ZYMV) la courgette (ZYMV) mosaikvirus (ZYMV)

Resistencia al virus del mosaico amarillo del calabacín (ZYMV)

QL

absent

absente

fehlend

ausente

Corona, Hilton, Ventura

1

present

présente

vorhanden

presente

Dina, Summerstar, Thunder

9

TC/50/30 Annexe, page 5 Proposition de révision du chapitre 8 : Explications du tableau des caractères Proposition visant à inclure un format révisé pour les caractères de résistance aux maladies sous la section 8.2 (Le libellé actuel et le nouveau libellé proposé sont présentés sur des pages se faisant face)

Libellé actuel : Ad. 44 : Résistance à Cladosporium cucumerinum (Ccu) Méthode Maintien de la maladie Nature du milieu : Conditions particulières : Observations :

Préparation de l’inoculum :

Gélose dextrosée à la pomme de terre 7 à 8 jours dans l’obscurité à 20C La suspension de spores doit avoir une concentration de 0,5 x 105 spores/ml. À maintenir au réfrigérateur à 4°C pendant 4 jours au maximum. Enlever par raclage le champignon de la gélose dextrosée à la pomme de terre, le recueillir dans un vase à bec et le filtrer au travers d’une mousseline.

Culture Semis : Température : Lumière : Nombre de plantes :

En terre d’empotage ou compost 22/20C (j/n) Au moins 16 heures 30 plantes par échantillon

Inoculation Stade des plantes : Méthode d’inoculation :

Les plantes doivent avoir une première feuille d’un diamètre de trois centimètres. Pulvériser la suspension sporale sur les feuilles.

Conditions particulières après inoculation Température : Lumière : Conditions particulières :

22/20C (j/n) Au moins 16 heures Couvercle plastique posé sur les plantes. Le couvercle est fermé pendant les trois premiers jours, puis légèrement ouvert durant le jour.

Durée de l’examen - Semis – inoculation : - Inoculation – dernière lecture :

Variétés témoins :

12 jours 6 à 8 jours

Résistance absente : Pepinex 69 Résistance présente : Maketmore 76

TC/50/30 Annexe, page 6 Nouveau libellé proposé : Ad. 44 : Résistance à Cladosporium cucumerinum (Ccu) 1. 2. 3. 4. 5.

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat

6. 7.

9. 9.1 9.2 9.3

Identification de l’isolat Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum Vérification de l’inoculum récolté Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins

9.4

Protocole d’essai

9.5 9.6 9.7 9.8 9.9

Installation d’essai Température Lumière Saison Mesures spéciales

10. 10.1 10.2 10.3

Inoculation Préparation de l’inoculum Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation Méthode de l’inoculation Première observation Seconde observation Observations finales Observations Méthode Échelle d’observation [1] absente : Frontera [9] présente : Corona

8. 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8

10.4 10.5 10.6 10.7 11. 11.1 11.2

Cladosporium cucumerinum non Cucumis sativus (concombre ou cornichon) Naktuinbouw (NL) naturel; à prélever sur n’importe quelle source d’infection en plein champ réactions attendues sur des variétés témoins résistantes symptômes sur des variétés témoins sensibles

p. ex. : Gélose dextrosée à la pomme de terre (PDA) eau déminéralisée stérile racler les boîtes de Pétri et étaler sur de nouvelles plaques de sous-cultures vieilles de 7 à 8 jours dans l’obscurité à 20°C 4 jours à 4°C

au moins 20 1 Cherubino, Frontera, Pepinex 69 (sensibles) Corona, Marketmore 76, Sheila (résistantes) p. ex. après tous les 8 échantillons, 16 plantes résistantes et 16 plantes sensibles 18 ou 22/20°C jour/nuit au moins 16 heures veiller à ce que le sol ne soit pas sec au moment de l’inoculation; tente plastique fermée le jour et la nuit pendant les trois premiers jours après l’inoculation; puis légèrement ouverte en cours de journée facultatif : ajouter 0,01% de Tween à la suspension de spores 0,5*105 -0,5*106 spores/ml jeune cotylédon ou première vraie feuille pulvérisation d’une suspension de spores 6 jours après inoculation 8 jours après inoculation 8 jours après inoculation visuelle, comparative lésions brunâtres sur les cotylédons et mort de la plante sans symptômes, ou avec des lésions vertes, ou brunissement des feuilles

TC/50/30 Annexe, page 7 11.3 11.4 12.

13.

Validation de l’essai Hors-types Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

sur variétés témoins maximum 1 sur 6-35 plantes QL

température et humidité

TC/50/30 Annexe, page 8

TC/50/30 Annexe, page 9 Libellé actuel : Ad. 45 : Résistance au virus de la mosaïque du concombre Méthode Maintien de la maladie Nature du milieu : Observations :

Sur des plantes vivantes sensibles Maintenir la serre exempte de pucerons

Préparation de l’inoculum :

Mélanger à de l’eau les feuilles venant d’être infectées. Préparer une solution d’une concentration de 1 :15 (inoculum : eau).

Culture Semis : Température : Lumière : Nombre de plantes :

En terre d’empotage ou compost 22/20C (j/n) Au moins 16 heures 30 plantes par échantillon

Inoculation Stade des plantes : Méthode d’inoculation :

Cotylédons pleinement développés Inoculation mécanique par abrasion des cotylédons à la poudre de carborundum. Lavage des cotylédons après inoculation.

Conditions particulières après inoculation Température : Lumière :

22/20C (j/n) 16 heures

Durée de l’examen - Semis – inoculation : - Inoculation – dernière lecture :

6 à 7 jours 10 à 4 jours

Mode d’observation : 1.

Sensibilité II III

2.

GeleTros

Résistance moyenne IV V

VI 3.

croissance limitée, cloqûres faibles sur le cotylédon, feuilles complètement marbrées feuilles frisées, symptômes de la mosaïque forts sur la totalité des feuilles

feuilles frisées, symptômes de la mosaïque légers feuilles légèrement frisées, symptômes de la mosaïque légers, nombre important de taches nécrotiques feuilles non frisées, symptômes de la mosaïque vagues, petit nombre nécrotiques

Gardon

Forte résistance VII

VIII

symptômes très peu importants de l’infection virale, nombre très peu important de taches nécrotiques aucun symptôme

Hokus, Naf

TC/50/30 Annexe, page 10 Nouveau libellé proposé : Ad. 45 : Résistance au virus de la mosaïque du concombre (CMV) 1. 2. 3. 4. 5. 6.

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat Identification de l’isolat

7.

Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation

8. 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8 9. 9.1 9.2 9.3

Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum Vérification de l’inoculum récolté Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins

10.4 10.5 10.6 10.7

Protocole d’essai Installation d’essai Température Lumière Saison Mesures spéciales Inoculation Préparation de l’inoculum Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation Méthode de l’inoculation Première observation Seconde observation Observations finales

11. 11.1

Observations Méthode

9.4 9.5 9.6 9.7 9.8 9.9 10. 10.1 10.2 10.3

virus de la mosaïque du concombre non Cucumis sativus (concombre ou cornichon) Naktuinbouw (NL), GEVES (FR) p. ex. UK 6 variétés de contrôle résistantes et sensibles ou jauge ELISA (Agdia) inoculation de variétés de contrôle sensibles

sur des plantes vivantes sensibles témoin sensible cotylédons solution tampon de phosphate glacée + carborundum + charbon actif par friction feuille symptomatique fraîche inoculation fictive avec PBS + carborundum 8 heures à 4°C ou sur de la glace

au moins 30 3 Bosporus, Corona, Ventura (sensibles), Capra, Gardon, Verdon (à résistance moyenne), Naf, Picolino (à forte résistance) p. ex. répétitions sur différentes tablettes en serre serre ou chambre climatisée 18-25°C /15-20°C jour/nuit ou 22°C constant au moins 16 heures meilleurs résultats en avril-mai et septembre-octobre maintenir la serre exempte de pucerons feuille fraîche broyée dans une PBS froide cotylédons, p. ex. : 8 et 11 jours après les semis friction, enlever par lavage le carborundum 7 jours après inoculation 14 jours après inoculation 21 jours après inoculation, symptômes de la première et de la deuxième feuilles; nécessaire uniquement lorsque la seconde observation n’est pas décisive estimation visuelle de la sévérité mosaïque sur la première feuille

TC/50/30 Annexe, page 11

11.3

Échelle d’observation [1] sensible : 3, Corona, Ventura [1] sensible : 4, Bosporus [2] résistance moyenne : 5, Gardon, Verdon [2] résistance moyenne : 6, Capra [3] forte résistance : 7, Naf, Picolino Validation de l’essai

11.4

Hors-types

12.

Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

11.2

13.

mosaïque; nette séparation entre le jaune et le vert forte marbrure; chlorose confluente légère marbrure; îles chlorotiques granulation chlorotique aucun symptôme Les variétés témoins doivent être conformes à la description; décrire si elles sont différentes. La variation ne doit pas dépasser 1 point d’échelle différence de 2 points d’échelle avec le type majoritaire, maximum 1 sur 6 à 35 plantes QN [1] 3-4 sensible, [2] 5-6 moyennement résistant, [3] 7 hautement résistant 1. Les symptômes se transformeront de taches annulaires en mosaïque (Ventura), marbrure (Gardon) ou taches (Capra) L’observation doit porter sur les symptômes matures. 2. Les pucerons peuvent transmettre le virus de la mosaïque du concombre ainsi que d’autres virus qui peuvent en contaminer la souche. L’essai doit avoir lieu dans un compartiment exempt de pucerons. 3. L’inhibition de la croissance n’est en général pas suffisamment forte que pour la mesurer chez les jeunes plantes; une sévère inhibition de la croissance sera plus vraisemblablement causée par une aberration génétique que par une infection virale. 4. La frisure des feuilles n’est pas mentionnée comme étant un symptôme du virus de la mosaïque du concombre car elle est normalement causée par des conditions de croissance déséquilibrées. 5. Les répétitions ont pour objet de contrôler la principale source de variation. Pour le virus de la mosaïque du concombre, cela signifie en général la quantité de rayons du soleil. C’est pourquoi les tablettes de répétition doivent représenter les différents niveaux d’ombrage à l’intérieur d’un compartiment de serre.

TC/50/30 Annexe, page 12

TC/50/30 Annexe, page 13 Libellé actuel : Ad. 46 : Résistance à l’oïdium (Podosphaera xanthii) (Sf) Méthode

Maintien de la maladie Nature du milieu :

Sur des plantes vivantes sensibles

Préparation de l’inoculum :

Enlever par lavage les spores des feuilles infectées et préparer une suspension avec une concentration de 105 spores/ml. Filtrer cette suspension au travers d’une mousseline avant d’infecter les plantes.

Culture Semis : Température : Lumière : Nombre de plantes :

En terre d’empotage ou compost 22/20C (jour/nuit) Au moins 16 heures 30 plantes par échantillon

Inoculation Stade des plantes : Méthode d’inoculation :

Cotylédons pleinement développés Pulvériser la suspension sporale sur les feuilles, les premier, deuxième et cinquième jours après repiquage.

Conditions particulières après inoculation Température : Lumière :

20/20C (j/n) 16 heures

Durée de l’examen - Semis – inoculation - Inoculation – dernière lecture :

7, 8 et 11 jours 12 jours

Mode d’observation 1. 2. 3.

Sensibilité : hypocotyles et cotylédons infectés, première feuille fortement infectée, forte sporulation. Résistance moyenne : hypocotyles non infectés, cotylédons et première feuille modérément infectés avec une sporulation modérée et une colonisation modérée. Forte résistance : hypocotyles et cotylédons non infectés, première feuille très faiblement infectée ou pas infectée, peu de colonies, très faible sporulation.

Variétés témoins :

1. Sensibilité : Corona 2. Résistance moyenne : Flamingo 3. Forte résistance : Cordoba

TC/50/30 Annexe, page 14 Nouveau libellé proposé : Ad. 46 : Résistance à l’oïdium (Podosphaera xanthii) (Px) 1. 2. 3. 4. 5.

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat

6. 7.

8.4 8.5 8.6

Identification de l’isolat Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum

8.7

Vérification de l’inoculum récolté

8.8

Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins

8. 8.1 8.2 8.3

9. 9.1 9.2 9.3

10.4

Protocole d’essai Installation d’essai Température Lumière Saison Mesures spéciales Inoculation Préparation de l’inoculum Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation Méthode de l’inoculation

10.5 10.6 10.7 11. 11.1

Première observation Seconde observation Observations finales Observations Méthode

9.4 9.5 9.6 9.7 9.8 9.9 10. 10.1 10.2 10.3

oïdium Podosphaera xanthii (Sphaerotheca fuliginea) non Cucumis sativus (concombre ou cornichon) naturelle ou Naktuinbouw (NL) naturel; à prélever sur n’importe quelle source d’infection en plein champ réactions attendues sur des variétés témoins résistantes symptômes sur des variétés témoins sensibles

plantes variété sensible (p. ex. Ventura) apparition de la première feuille eau déminéralisée pulvérisation enlever les spores des feuilles qui en présentent avec de l’eau déminéralisée option : ajouter du Tween20 à 5 µL (1 goutte)/litre filtrer avec une mousseline. 0,75 ml/pl compte de spores; la concentration visée est de 1,105 spores/ml 15 minutes

au moins 20 1 Corona, Ventura (sensible), Flamingo (moyennement résistante), Aramon, Bella, Cordoba (hautement résistante) 20°C constant 16 heures meilleurs résultats en automne (septembre/novembre) comme ci-dessus à 8.6 1,105 spores/ml cotylédon à la 1re inoculation, première feuille à l’inoculation finale pulvérisation, inoculation répétée les 3e, 5e et 6e jours après la 1re 10 jours après inoculation 14 jours après inoculation visuelle, comparative; principalement sur la première feuille

TC/50/30 Annexe, page 15 11.2

Échelle d’observation [1] sensible : Corona, Ventura

11.3 11.4 12.

13.

[2] moyennement résistante : Flamingo [3] hautement résistante : Aramon, Bella, Cordoba Validation de l’essai Hors-types Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

sporulation sur les cotylédons et les hypocotyles; forte sporulation sur la première feuille sporulation sur les cotylédons et les hypocotyles; forte sporulation sur la première feuille pas de sporulation sur les hypocotyles, sporulation modérée sur les cotylédons et la première feuille les symptômes sur les cotylédons sont ignorés très légère sporulation parfois sur la première feuille sur des variétés témoins pas plus de 1 sur 6 à 35 plantes QN [1] sensible, [2] moyennement résistante, [3] hautement résistante Quelques types de résistance modérée peuvent rompre à températures plus élevées.

TC/50/30 Annexe, page 16

TC/50/30 Annexe, page 17 Libellé actuel : Ad. 47 : Résistance au mildiou (Pseudoperonospora cubensis) (Pc) Méthode Maintien de la maladie

Nature du milieu :

Sur des plantes vivantes sensibles

Préparation de l’inoculum :

Enlever par lavage à l’eau froide distillée les spores des feuilles infectées et préparer une suspension. L’utiliser immédiatement.

Culture Semis : Température : Lumière : Nombre de plantes :

En terre d’empotage ou compost 22/20C (j/n) Au moins 16 heures 30 plantes par échantillon

Inoculation Stade des plantes : Méthode d’inoculation :

Deux premières feuilles pleinement développées Pulvériser la suspension sporale sur les feuilles.

Conditions particulières après inoculation Température : Lumière : Humidité relative :

22/20C (j/n) 16 heures 100%, 48 heures après inoculation

Conditions particulières : Couvercle plastique posé sur les plantes. Le couvercle est fermé pendant les trois premiers jours, puis légèrement ouvert durant le jour. Durée de l’examen - Semis – inoculation : - Inoculation – dernière lecture :

20 jours + 10 jours

Méthode d’observation : Sensibilité : larges lésions avec production abondante de spores, nécrose du tissu foliaire dans les cinq jours. Résistance moyenne : lésions de taille moyenne, période de jaunissement du tissu dépassant 10 jours. Forte résistance : lésions de petite taille, début de nécrose du tissu lisse au centre, absence de production de spores visible. Variétés témoins :

Sensibilité : Pepinex 69, SMR 58 Résistance moyenne : Poinsett Forte résistance :

TC/50/30 Annexe, page 18 Nouveau libellé proposé : Ad. 47 : Résistance au mildiou (Pseudoperonospora cubensis) (Pcu) 1. 2. 3. 4. 5.

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat

6.

Identification de l’isolat

7.

Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum Vérification de l’inoculum récolté Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins Protocole d’essai Installation d’essai Température Lumière Saison Mesures spéciales

8. 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8 9. 9.1 9.2 9.3 9.4 9.5 9.6 9.7 9.8 9.9

10. 10.1 10.2 10.3 10.4 10.5 10.6 10.7 11. 11.1 11.2

Inoculation Préparation de l’inoculum Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation Méthode de l’inoculation Première observation Seconde observation Observations finales Observations Méthode Échelle d’observation [1] absente : Pepinex 69, Wisconsin [9] présente : Poinsett76

mildiou (Pseudoperonospora cubensis) aucun Cucumis sativus (concombre ou cornichon) naturelle naturel; à prélever sur n’importe quelle source d’infection en plein champ réactions attendues sur des variétés témoins résistantes Pepinex 69, Wisconsin (absente), Poinsett 76 (présente) symptômes sur des variétés témoins sensibles

plantes vivantes variété sensible deux feuilles eau froide distillée pulvérisation en lavant une feuille présentant des spores en comptant les spores -

au moins 20 1 Pepinex 69, Wisconsin (absente), Poinsett 76 (présente) 22/20°C jour/nuit au moins 16 heures Maintenir 100% d’humidité pendant 24 heures. Un couvercle plastique est posé sur les plantes. Après 24 heures, il est légèrement ouvert durant le jour. en lavant les feuilles présentant des spores en comptant 103 spores par ml deux premières feuilles pleinement développées en pulvérisant la suspension de spores sur les feuilles 7 jours après inoculation 10 jours après inoculation visuelle, comparative larges lésions avec sporulation abondante, le tissu foliaire devenant nécrotique dans les 5 jours petites lésions circulaires, nécrotiques au centre; sporulation visible macroscopiquement; aucun témoin très résistant n’est disponible

TC/50/30 Annexe, page 19 11.3 11.4 12.

13.

Validation de l’essai Hors-types Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

QL [1] absente, [9] présente

TC/50/30 Annexe, page 20

TC/50/30 Annexe, page 21 Libellé actuel : Ad. 48 : Résistance à la pourriture Corynespora et à la septoriose (Corynespora cassiicola) (Cca) Méthode Maintien de la maladie

Nature du milieu : Conditions particulières : Observations :

Préparation de l’inoculum :

Gélose dextrosée à la pomme de terre 12 à 14 jours dans l’obscurité à 20C La suspension de spores doit avoir une concentration de 0,5 x 105 spores/ml. À maintenir au réfrigérateur à 4°C pendant 4 jours au maximum. Enlever par raclage le champignon du milieu nutritif, le recueillir dans un vase à bec et le filtrer au travers d’une mousseline.

Culture Semis : Température : Lumière : Nombre de plantes :

En terre d’empotage ou compost 22/20C (j/n) Au moins 16 heures 30 plantes par échantillon

Inoculation Stade des plantes : Méthode d’inoculation :

Les plantes doivent avoir une première feuille d’un diamètre de trois centimètres. Pulvériser la suspension sporale sur les feuilles

Conditions particulières après inoculation Température : Lumière : Conditions particulières :

25/15C (j/n) Au moins 16 heures Couvercle plastique posé sur les plantes. Le couvercle est fermé pendant les trois premiers jours, puis légèrement ouvert durant le jour.

Durée de l’examen - Semis – inoculation : - Inoculation – dernière lecture :

12 à 13 jours 8 à 10 jours

Méthode d’observation : 1.

Sensible a) b)

2.

cotylédons et première feuille morts, plante à croissance fortement réduite; cotylédons morts ou fortement infectés, première feuille faiblement infectée, plante à croissance fortement réduite

Résistante a) b)

cotylédons fortement infectés, première feuille non infectée, plante à croissance normale; cotylédons et première feuille non infectés, plante à croissance normale.

Variétés témoins Résistance absente : Pepinova (1a) et Cerrucho, Goya (1b) Résistance présente : Cumlaude, Edona (2a) et Corona (2b)

TC/50/30 Annexe, page 22 Nouveau libellé proposé : Ad. 48 : Résistance à la pourriture corynespora et à la septoriose (Corynespora cassiicola) (Cca) 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat Identification de l’isolat Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum

9. 9.1 9.2 9.3 9.4 9.5 9.6

Vérification de l’inoculum récolté Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins Protocole d’essai Installation d’essai Température

9.7 9.8

Lumière Saison

9.9

Mesures spéciales

10. 10.1

Inoculation Préparation de l’inoculum

10.2 10.3

Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation

10.4 10.5 10.6 10.7 11. 11.1

Méthode de l’inoculation Première observation Seconde observation Observations finales Observations Méthode

8.7 8.8

Corynespora cassiicola (septoriose) non Cucumis sativus (concombre ou cornichon) Naktuinbouw (NL) toutes les sources d’inoculum sont égales réactions attendues sur des variétés témoins résistantes symptômes sur des variétés témoins sensibles

PDA à 20°C dans l’obscurité eau déminéralisée racler les boîtes de Pétri et étaler sur de nouvelles plaques de sous-cultures vieilles de 12 à 14 jours dans l’obscurité à 20°C max. 4 jours à 4°C

au moins 20 1 Bodega, Pepinova (absente), Corona, Cumlaude (présente) 25/15°C jour/nuit ou 23°C jour/nuit dans une chambre climatisée au moins 16 heures meilleurs résultats obtenus en février-avril en raison de la température veiller à ce que le sol ne soit pas sec au moment de l’inoculation; tente plastique fermée jour et nuit 3 jours après l’inoculation, fermée uniquement la nuit >3 jours après inoculation filtrer au travers d’une mousseline; ajouter 0,01% de Tween à la suspension de spores 0,5x105 spores/ml diamètre de la première vraie feuille environ 3 cm repiquer le 7e jour, puis inoculer le 12e pulvérisation de la suspension de spores 8 jours après inoculation 8-11 jours après inoculation visuelle; comparative; principalement sur le cotylédon et la première feuille

TC/50/30 Annexe, page 23 11.2

Échelle d’observation [1] très sensible : 1, Bodega [1] sensible : 2, Pepinova [9] résistante : 3, Cumlaude

11.3 11.4 12.

13.

[9] hautement résistante : 4, Corona Validation de l’essai Hors-types Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

cotylédons morts, premières feuilles mortes, retard de croissance cotylédons morts ou couverts de lésions, premières feuilles sans lésions, retard de croissance cotylédons avec un petit nombre de lésions, première feuille sans lésions ou parfois avec un petit nombre de lésions cotylédons sans lésions; première feuille sans lésions Les variétés témoins doivent être conformes à la description; décrire si elles sont différentes. maximum 1 sur 6 à 35 plantes QL [1] 1-2 absente, [9] 3-4 présente

-

TC/50/30 Annexe, page 24

TC/50/30 Annexe, page 25 Libellé actuel : Ad. 49 : Résistance au virus du jaunissement des nervures du concombre Méthode

Maintien des isolats Nature du milieu : Conditions particulières :

Sur des plantes vivantes sensibles Inoculum frais, ou inoculum stocké à ‑20˚C pendant trois mois au maximum

Réalisation de l’examen Stade des plantes : Température : Lumière : Méthode de culture : Méthode d’inoculation : Durée de l’examen : Nombre de plantes examinées : Variétés témoins :

Apparition de la première feuille 16 à 30˚C 16 heures Serre Mécanique, par friction sur les cotylédons De l’inoculation à la lecture : 14 jours Au moins 15 plantes Sensible : Corona Résistante : Tornac

Observation :

Les variétés résistantes peuvent présenter une légère décoloration des nervures des feuilles plus anciennes.

TC/50/30 Annexe, page 26 Nouveau libellé proposé : Ad. 49 : Résistance au virus du jaunissement des nervures du concombre (CVYV) 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7.

9. 9.1 9.2 9.3

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat Identification de l’isolat Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum Vérification de l’inoculum récolté Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins

9.4 9.5 9.6 9.7 9.8 9.9 10. 10.1

Protocole d’essai Installation d’essai Température Lumière Saison Mesures spéciales Inoculation Préparation de l’inoculum

10.2 10.3 10.4

Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation Méthode de l’inoculation

10.5 10.6 10.7

Première observation Seconde observation Observations finales

11. 11.1

Observations Méthode

8. 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8

virus du jaunissement des nervures du concombre non Cucumis sativus (concombre ou cornichon) Naktuinbouw (NL) p. ex. KB18 contrôles de résistance et de sensibilité inoculation de variétés sensibles

feuille variété sensible (p. ex. Corinda) cotylédons / apparition de la première feuille feuille dans une PBS glacée + carborundum par friction feuille lyophilisée 8 heures à 4°C ou sur de la glace

au moins 30 1 Corinda, Corona, Ventura (sensible), Dina, Summerstar, Tornac (résistante) serre 16-30°C 16 heures au moins meilleurs résultats en avril-mai et septembre-octobre 12 000 lux suggérés; maintenir la serre exempte de pucerons feuille fraîche broyée dans 0,03 M de PBS + carborundum + charbon actif cotylédons friction, option : enlever par lavage le carborundum pour éviter une altération foliaire 7 jours après inoculation; symptômes du cotylédon 14 jours après inoculation; symptômes de la première feuille 21 jours après inoculation, symptômes des première et deuxième feuilles visuelle; comparative, principalement sur la première feuille

TC/50/30 Annexe, page 27 11.2

11.3

11.4 12.

13.

Échelle d’observation [1] sensible : 3, Corinda, Corona [1] sensible : 4, Ventura [9] résistante : 5, Dina [9] résistante : 6, Summerstar [9] résistante : 7, Tornac Validation de l’essai

Hors-types Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

mosaïque; nette séparation entre le jaune et le vert forte marbrure; chlorose confluente légère marbrure; îles chlorotiques quelques granulations chlorotiques aucun symptôme Les variétés témoins doivent être conformes à la description; décrire si elles sont différentes. La variation ne doit pas dépasser 1 point d’échelle. maximum 1 sur 6 à 35 plantes QL [1] 3-4 absente, [9] 5-7 présente

Les variétés résistantes peuvent présenter une légère décoloration des nervures des feuilles plus anciennes.

TC/50/30 Annexe, page 28

TC/50/30 Annexe, page 29 Libellé actuel : Ad. 50 : Résistance au virus de la mosaïque jaune de la courgette Méthode

Maintien des isolats Nature du milieu : Conditions particulières :

Sur des plantes vivantes sensibles Inoculum frais ou stocké pendant six mois au maximum à ‑20˚C

Réalisation de l’examen Stade des plantes : Température : Lumière : Méthode de culture : Méthode d’inoculation : Durée de l’examen : Nombre de plantes examinées : Variétés témoins :

Observation :

Apparition de la première feuille 23 à 25˚C jour et nuit 16 heures Serre Mécanique, par friction sur les cotylédons De l’inoculation à la lecture : 14 jours Au moins 15 plantes Sensible : Corona Résistante : Dina

Les variétés résistantes peuvent présenter une légère décoloration des nervures des feuilles plus anciennes. Les variétés sensibles présentent des symptômes généralisés de la mosaïque.

TC/50/30 Annexe, page 30 Nouveau libellé proposé : Ad. 50 : Résistance au virus de la mosaïque jaune de la courgette (ZYMV) 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8 9. 9.1 9.2 9.3 9.4 9.5 9.6 9.7 9.8 9.9 10. 10.1 10.2 10.3 10.4 10.5 10.6 10.7 11. 11.1 11.2

Agent pathogène État de quarantaine Espèces hôtes Source de l’inoculum Isolat Identification de l’isolat Détermination du pouvoir pathogène Multiplication de l’inoculum Milieu de multiplication Variété multipliée Stade de la plante lors de l’inoculation Milieu d’inoculation Méthode d’inoculation Récolte de l’inoculum Vérification de l’inoculum récolté Durée de conservation/ viabilité de l’inoculum Format de l’essai Nombre de plantes par génotype Nombre de répétitions Variétés témoins Protocole d’essai Installation d’essai Température Lumière Saison Mesures spéciales Inoculation Préparation de l’inoculum Quantification de l’inoculum Stade de la plante lors de l’inoculation Méthode de l’inoculation Première observation Seconde observation Observations finales Observations Méthode Échelle d’observation [1] absente : 4, Corona, Ventura [1] absente : 5, Hilton [9] présente : 6, Thunder [9] présente : 7, Dina, Summerstar

virus de la mosaïque jaune de la courgette aucun Cucumis sativus (concombre ou cornichon) Naktuinbouw (NL) p. ex. CU61 contrôles de résistance et de sensibilité inoculation des variétés sensibles

feuille variété sensible cotylédons / apparition de la première feuille PBS glacé + carborundum friction feuille fraîche ou sèche 8 heures à 4°C ou sur de la glace

au moins 30 1 Corona, Hilton, Ventura (sensible), Dina, Summerstar, Thunder (résistante) serre ou chambre climatisée 18-25°C /15-25°C jour/nuit au moins 16 heures meilleurs résultats en avril-mai et septembre-octobre 12 000 lux suggérés; maintenir la serre exempte de pucerons feuille fraîche broyée dans une PBS froide cotylédons / apparition de la première feuille -(p. ex. 8 jours; répéter 3 jours plus tard) par friction, enlever par lavage le carborundum 7–14 jours après inoculation; symptômes du cotylédon 14–21 jours après inoculation; symptômes de la première feuille 21 jours après inoculation, symptômes des première et deuxième feuilles visuelle; comparative, principalement sur la première feuille mosaïque; déformation de la feuille mosaïque; faible déformation de la feuille faible marbrure nécrose des nervures

TC/50/30 Annexe, page 31 11.3

Validation de l’essai

11.4

Hors-types

12.

Interprétation des données en termes de niveaux d’expression des caractères de l’UPOV Points critiques de contrôle

13.

Les variétés témoins doivent être conformes à la description; décrire si elles sont différentes. La variation ne doit pas dépasser 1 point d’échelle différence de 2 points d’échelle avec le type le plus présent, maximum 1 sur 30 plantes QL [1] 4-5 absente, [9] 6-7 présente

Les variétés résistantes peuvent présenter une légère décoloration des nervures des feuilles plus anciennes. Les variétés sensibles présentent des symptômes généralisés de la mosaïque.

TC/50/30 Annexe, page 32 Proposition de révision du chapitre 10 “Questionnaire technique” Section 5 : Caractères du tableau des caractères qui figurent dans le questionnaire technique Ajouter à la section 5 une option “n’a pas été examinée” aux caractères 44, 45, 46, 48 et 49 : 5. Caractères de la variété à indiquer (le chiffre entre parenthèses renvoie aux caractères correspondants dans les principes directeurs d’examen; prière d’indiquer la note appropriée). Caractères

Exemple de variétés

Note

[…] 5.9 (44)

Résistance à Cladosporium cucumerinum (Ccu)

absente

Cherubino, Frontera, Pepinex 69

1[ ]

présente

Corona, Marketmore 76, Sheila

9[ ]

n’a pas été examinée 5.10 (45)

[ ]

Résistance au virus de la mosaïque du concombre (CMV)

sensible

Bosporus, Corona, Ventura

1[ ]

moyennement résistant

Capra,Gardon, Verdon

2[ ]

hautement résistant

Naf, Picolino

3[ ]

n’a pas été examinée 5.11 (46)

[ ]

Résistance à l’oïdium (Podosphaera xanthii) (Px)

sensible

Corona, Ventura

1[ ]

moyennement résistant

Flamingo

2[ ]

hautement résistant

Aramon, Bella,Cordoba

3[ ]

n’a pas été examinée 5.12 (48)

[ ]

Résistance à la pourriture corynespora et à la septoriose (Corynespora cassiicola) (Cca) absente

Bodega

1[ ]

présente

Corona, Cumlaude

9[ ]

n’a pas été examinée 5.13 (49)

[ ]

Résistance au virus du jaunissement des nervures du concombre (CVYV)

absente

Corinda,Corona, Ventura

1[ ]

présente

Dina, Summerstar, Tornac

9[ ]

n’a pas été examinée

[ ]

TC/50/30 Annexe, page 33 Section 7 : Ajout de nouveaux caractères sous 7.3.1 Ajouter ce qui suit à la section 7 “Renseignements complémentaires pouvant faciliter l’examen de la variété” 7.3.1 Résistance aux parasites et aux maladies (si possible, veuillez préciser les pathotypes/souches) absente

présente

n’a pas été examinée

(a)

Résistance au mildiou (Pseudoperonospora cubensis) (Pcu) (car. 47)

[ ]

[ ]

[ ]

(b)

Résistance au virus de la mosaïque jaune de la courgette (ZYMV) (car. 50)

[ ]

[ ]

[ ]

[Fin de l’annexe et du document]

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