Nachweis und immunhistochemische Differenzierung von

January 12, 2018 | Author: Anonymous | Category: Wissenschaft, Gesundheitswissenschaften, Immunologie
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Aus der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie des St. Josef- Hospitals Bochum -Universitätsklinik der Ruhr-Universität BochumDirektor: Prof. Dr. med. P. Altmeyer

Nachweis und immunhistochemische Differenzierung von Entzündungszellen im Fettgewebe bei Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie

Inaugural-Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Medizin einer Hohen Medizinischen Fakultät der Ruhr-Universität Bochum

vorgelegt von Melanie Cisewski aus Marl 2012

Dekan:

Prof. Dr. med. Klaus Überla

Referent:

Prof. Dr. med. Alexander Kreuter

Korreferent:

Prof. Dr. med. Martina Bacharach-Buhles

Tag der Mündlichen Prüfung:

28.05.2013

Abstract Cisewski, Melanie Nachweis und Differenzierung von Entzündungszellen im Fettgewebe bei Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie Problem: Die zirkumskripte Sklerodermie ist eine Erkrankung aus dem Formenkreis der Kollagenosen. Ein bislang nicht abschließend geklärter Pathomechanismus führt zu einem sklerotischen Umbau der Haut. Je nach Subtyp können Dermis, Epidermis, Subkutis sowie die hautnahen extrakutanen Strukturen bestehend aus Faszien, Muskulatur und Knochen betroffen sein. Gegenstand der vorliegenden Arbeit war der Nachweis und die immunhistochemische Differenzierung von Entzündungszellen im Fettgewebe, im Sinne einer septalen Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie um neue Erkenntnisse über den Pathomechanismus und ggf. Hinweise auf die zukünftige Therapie zu erlangen. Als Referenzgruppe wurde von uns ein Patientenkollektiv mit Erythema nodosum als Prototyp einer septalen Pannikulitis gewählt. Methoden: Mittels immunhistochemischer Färbetechnik erfolgte die Differenzierung der für eine Entzündungsreaktion wichtigen Zellpopulationen in T-Lymphozyten (CD3+), T-Helferzellen (CD4+), zytotoxische/T-Suppressorzellen (CD8+), Granulozyten (CD15+), B-Lymphozyten (CD20+) und Makrophagen (CD68+) im Fettgewebe bei 28 Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie. Als Referenzgruppe verwendeten wir Hautproben von 20 Patienten mit der Diagnose eines Erythema nodosum. Ergebnisse: Die mikroskopische Auszählung der immunhistochemisch gefärbten Präparate ergab im Fettgewebe für die ZS im Vergleich zum EN signifikant weniger CD3+ (15,04±16,7 vs. 30,6±17,6; p< 0,002), CD8+ (10±12,5 vs. 18,3±10,9; p=0,00117) und CD68+ (14±15,8 vs. 38,7±13,4; p< 0,0001) positive Zellen. Kein signifikanter Unterschied ergab sich bei den Marken CD4 (negativ vs. 5,4±10,7; p=0,0790) und CD20 (15,7±25,7 vs. 5,6±6,5; p=0,7697). Diskussion: Die vorliegende Arbeit zeigt, dass immunhistochemische Zellen im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie sowie in der Referenzgruppe dem Erythema nodosum nachgewiesen werden können. Bis auf CD15 (Granulozyten) sowie CD4 (T-Helferzellen) bei der ZS ließen sich alle untersuchten Marker in den Proben nachweisen, was für den komplexen und bis dato nicht abschließend geklärten Pathomechanismus beider Krankheitsbilder spricht. Ein bedeutsamer Unterschied zwischen den Stichproben fand sich im quantitativen Auftreten von zytotoxischen CD3+/CD8+ Zellen bzw. von Makrophagen (CD68). Die Evaluation der Entzündungszellen im Fettgewebe bei der ZS soll in Zukunft ein besseres Verständnis des Pathomechanismus bei der ZS erbringen und ggf. therapeutische Konsequenzen daraus entwickeln lassen.

Für Klaudia

Inhaltsverzeichnis 1

Einleitung

1.1

Die Geschichte der Sklerodermie

1.2

Die zirkumskripte Sklerodermie 1.2.1

1.3

Seite 7

Definition der zirkumskripten Sklerodermie

1.3.1

Definition der systemischen Sklerodermie

1.3.2

Vergleich der systemischen Sklerodermie

1.4

Epidemiologie der zirkumskripten Sklerodermie

1.5

Ätiologie der zirkumskripten Sklerodermie

8-9 9 9

1.5.1

Trauma

10

1.5.2

Radiatio

10

1.5.3

Medikamente

10

1.5.4

Infektion

11

Klassifikation der zirkumskripten Sklerodermie 1.6.1

Übersicht der Klassifikation

11-12

1.6.2.1

Die limitierte Sklerodermie

12

1.6.2.2

Die Plaque Morphea

12

1.6.2.3

Die Guttata Morphea

13

1.6.2.4

Atrophodermia of Pierini-Pasini

13

1.6.3.1

Generalisierte Form der zirkumskripten Sklerodermie

13

1.6.3.2

Die eosinophile Fasziitis

13-14

1.6.3.3

Disabling pansclerotic morphea

14

1.6.4.1

Lineare Form der zirkumskripten Sklerodermie

14

1.6.4.2

Zirkumskripte Sklerodermie vom Typ ,,En coup de sabre“

14

1.6.4.3

Progressive faziale Hemiatrophie

15

1.6.5.1

Tiefe Form der zirkumskripten Sklerodermie (Deep Morphea)

1.7

8

Die systemische Sklerodermie

mit der zirkumskripten Sklerodermie

1.6

7

15

Diagnostik der zirkumskripten Sklerodermie 1.7.1

Laborchemische Parameter

1.7.2

Antikörperprofile bei der zirkumskripten Sklerodermie

15 16-17 1

1.8

Allgemeine Histopathologie der zirkumskripten Sklerodermie

17

1.9

Pathogenese der zirkumskripten Sklerodermie

18-19

1.10 Therapiemöglichkeiten 1.10.1

Topische Therapie

19-20

1.10.2

Die systemische Therapie

20

1.10.3

Phototherapie

20-21

1.10.4

Chirurgische Therapie

21-22

1.11 Die Pannikulitis 1.11.1

Definition der Pannikulitis

22

1.11.2

Klinisches Erscheinungsbild der Pannikulitis

22

1.12

Klassifikation und Einteilung der Pannikulitis 1.12.1

Lobuläre Pannikulitis:

23-24

1.12.2

Septale Pannikulitis:

24-25

1.13 Die Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie

25-26

1.14 Das Erythema nodosum 1.14.1

Definition des Erythema nodosum

25

1.15 Epidemiologie und Ätiologie

26

1.16 Klinisches Erscheinungsbild des Erythema nodosum

26-27

1.17 Diagnostik des Erythema nodosum

27

1.18 Histologie des Erythema nodosum

27-28

1.19 Pathogenese des Erythema nodosum

28

1.20 Therapiemöglichkeiten des Erythema nodosum

28

1.21 Das Immunsystem im Rahmen einer Entzündung

28

1.22 Das angeborene oder unspezifische Immunsystem

29-30

1.23 Das adaptive Immunsystem

30

2

Aktuelle Zielsetzung

31

3

Material & Methoden

3.1

Einleitung

32

3.2

Das Patientenkollektiv

32-33

3.3

Entnahme und Herstellung der Gewebeproben

33

3.3.1

Gewebevorbehandlung und Paraffineinbettung

33-34

3.3.2

Entparaffinisierung und Färbevorbehandlung

34

3.4

Immunhistochemische Färbung der Gewebeschnitte

3.5

Immunhistochemische Marker 3.5.1

CD3

35-36 37 2

3.5.2

CD4

37-38

3.5.3

CD8

38

3.5.4

CD15

38

3.5.5

CD20

38

3.5.6

CD68

39

3.6

Auswertung der Gewebeschnitte

39-40

3.7

Auswertung und Statistik

40

4

Ergebnisse

4.1

Auswertung der HE gefärbten Präparate

4.2

4.1.1

Auswertung bei der zirkumskripten Sklerodermie

41

4.1.2

Auswertung beim Erythema nodosum

41

Auswertung der Immunhistochemie 4.2.1

Expression von CD3 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.2

Expression von CD3 im Fettgewebe beim Erythema nodosum

4.2.3

42 42

Vergleich der CD3 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum

4.2.4

Expression von CD4 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.5

43

Expression von CD4 im Fettgewebe beim Erythema nodosum

4.2.6

43

44

Vergleich der CD4 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum

4.2.7

Expression von CD15 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.8

46

Expression von CD8 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.10

45

Expression von CD15 im Fettgewebe beim Erythema nodosum

4.2.9

45

46

Expression von CD8 im Fettgewebe beim Erythema nodosum

47 3

4.2.11

Vergleich der CD8 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum

4.2.12

CD20 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.13

49

CD68 Expression im Fettgewebe bei dem Erythema nodosum

4.2.16

48

Expression von CD68 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.15

48

CD20 Expression im Fettgewebe bei dem Erythema nodosum

4.2.14

47

50

Vergleich der CD68 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum

51

5

Diskussion

5.1

Die septale Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie

52-53

5.2

Die septale Pannikulitis beim Erythema nodosum

53

5.3

Interpretation und Diskussion der immunhistologischen Untersuchung

54-60

5.4

Diskussion der Methodik

60-61

5.5

Perspektiven

61-62

6

Zusammenfassung

63

7

Literaturverzeichnis

64-81

Danksagung Lebenslauf

4

Abbildungsverzeichnis Abbildung 1:

CD3 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

Abbildung 2:

CD3 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

Abbildung 3:

49

CD68 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

Abbildung 10:

48

CD20 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

Abbildung 9:

47

CD20 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

Abbildung 8:

46

CD8 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

Abbildung 7:

45

CD8 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

Abbildung 6:

44

CD4 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

Abbildung 5:

43

Negative CD4 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

Abbildung 4:

42

50

CD68 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

51

5

Tabellenverzeichnis Tabelle 1:

Verdünnungsangaben der verwendeten Antikörper

Tabelle 2:

Expressionsunterschiede immunhistochemisch

36

angefärbter Entzündungszellen im Fettgewebe bei Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie (ZS) und Patienten mit einem Erythema nodosum (EN)

41

6

1 Einleitung 1.1 Die Geschichte der Sklerodermie Der Name Sklerodermie leitet sich aus den griechischen Wörtern skleros (hart) und derma (Haut) ab. Er ist ein Sammelbegriff für eine heterogene Krankheitsgruppe, welche die systemische Sklerose, die zirkumskripte Sklerodermie mit ihren klinischen Subtypen und die sogenannten Überlappungssyndrome umfasst. Die systemische Sklerodermie stellt eine chronisch-entzündliche Autoimmunerkrankung der Haut mit und ohne Beteiligung der inneren Organe dar (Miehle et al., 1999). Der Terminus Sklerodermie wird oft mit den Begriffen systemische Sklerodermie oder progressiv systemische Sklerose synonym verwendet, wodurch sich terminologische Probleme ergeben. Bereits in den Schriften von Hippocrates (460-370 v.Chr.) wurde von Fällen mit Hauterkrankungen ähnlich denen der Sklerodermie berichtet. Die erste sichere Beschreibung der Krankheit veröffentlichte im Jahre 1753 der italienische Arzt Carlo Curzio in einer Monographie. Hier beschrieb der Mediziner eine 17-jährige Patientin, die ihm mit einem Symptomkomplex aus umschriebenen Verhärtungen der Haut und perioralem Engegefühl zugewiesen worden war. Seine klinische Untersuchung ergab einen Wärmeverlust der Haut bei ungestörten peripheren Pulsen. Die sonstige Anamnese war unauffällig. Seine Behandlung bestand aus warmen Milch- und Dampfbädern, wiederholtem Aderlass und der Gabe von kleinen Dosen Quecksilber (Capusan, 1971). Ein Jahrhundert (1845) später folgte die erste Beschreibung von sklerodermiformen Erkrankungen mit systemischem Organbefall durch den französischen Mediziner Elie Gintrac (Gintrac, 2010). Das Alibert Keloid Syndrom war die erste detaillierte Beschreibung einer Morphea im Jahre 1854 (Addison, 1854). Die histopathologischen Veränderung der Sklerodermie mit ihren vermehrten Kollagenfaserbündeln und der verdickten Wandstruktur von Gefäßen wurde in der Arbeit von Matsui im Jahre 1924 erfasst (Matsui, 1924).

7

1.2 Die zirkumskripte Sklerodermie 1.2.1 Definition der zirkumskripten Sklerodermie Die zirkumskripte Sklerodermie ist eine Erkrankung aus dem Formenkreis der Kollagenosen. Bei der zirkumskripten Sklerodermie führen bislang nicht abschließend geklärte Pathomechanismen zu einem sklerotischen Umbau der Haut (Vierra and Cunningham, 1999; Kreuter, 2012). Je nach Subtyp können Dermis, Epidermis, Subkutis sowie hautnahe extrakutane Strukturen bestehend aus Faszien, Muskulatur und Knochen betroffen sein (Zulian et al., 2005; Zulian, 2004; Kreuter et al., 2009). Die zirkumskripte Sklerodermie ist nicht mit dem Raynaudsyndrom, der Akrosklerose oder einer inneren Organbeteiligung assoziiert (Jablonska and Blaszczyk, 2004).

1.3 Die systemische Sklerodermie 1.3.1 Definition der systemischen Sklerodermie Abzugrenzen ist die zirkumskripte Sklerodermie mit ihrer distinktiven Ätiologie, Verlauf und Prognose von der systemischen Sklerodermie (Harrison et al., 2009). Bei der systemischen Sklerodermie handelt es sich um eine chronisch verlaufende Systemerkrankung mit humoralen und zellulären Immunphänomenen im Rahmen einer Autoimmunerkrankung (Altmeyer and Bacharach-Buhles, 2002). Gekennzeichnet ist die systemische Sklerodermie durch einen sklerotischen Umbau der Haut, von verschiedenen inneren Organe sowie einer begleitenden obliterierenden Angiopathie. Neben den Hautsklerosen sind in erster Linie die Lunge, meist in Form einer Lungenfibrose oder pulmonal-arteriellen Hypertonie, die Speiseröhre mit dem Leitsymptom der Dysphagie und die Nieren, einhergehend mit einem renalen Hypertonus und einer chronischen Proteinurie, betroffen. Zudem kann es zu einer obliterierenden Vaskulopathie des Herzmuskels sowie zu Veränderungen im Bewegungsapparat kommen (Harrison et al., 2009; Steen and Medsger, 2000). Die systemischen Sklerodermie unterteilt sich in die zwei klinischen Unterformen, die limitierte systemische Sklerodermie und die diffuse systemische Sklerodermie, worauf im weiteren Verlauf nicht näher eingegangen werden soll. Die Verlaufsform 8

der systemischen Sklerodermie ist sehr variabel und geht je nach Schwere der Organbeteiligung und deren Komplikationen mit einer erhöhten Mortalität einher.

1.3.2 Vergleich der systemischen Sklerodermie mit der zirkumskripten Sklerodermie Ein Übergang einer zirkumskripten Sklerodermie in eine systemische Sklerodermie tritt so gut wie nie auf, wurde jedoch in Einzelfällen beschrieben (Takehara and Sato, 2005; Birdi et al., 1993; Mayorquin et al., 1994; Dehen et al., 1994). Solche Übergänge wurden vor allem im Kindesalter gesehen (Zulian, 2004). Kinder erkranken häufiger an einer zirkumskripten Sklerodermie, vor allem an der linearen Form (Vierra and Cunningham, 1999). Bei ihnen geht die Erkrankung mit einer Beteiligung des Skeletts, der Augen oder des Nervensystems einher (Marzaano et al., 2003). Die zirkumskripte Sklerodermie kann zur systemischen Sklerodermie ein sehr ähnliches histologisches Bild zeigen. Eine Abgrenzung ist mikroskopisch nicht möglich (Haustein and Mittag, 2003; Mc Kee et al., 2005). Im Frühstadium zeigt sich bei der systemischen Sklerodermie ein perivaskuläres, periadnexielles, diffuses Rundzellinfiltrat mit Lymphozyten, Plasmazellen und wenigen Makrophagen. Zudem kommt es zur Ausbildung eines Dermisödems sowie einer geringen Fibrose. Im Spätstadium zeigt sich die Dermis verbreitert. In der Dermis und Subkutis findet man perivaskuläre Rundzellinfiltrate sowie verbreiterte Kollagenfaserbündel. Im Fettgewebe kann eine septale sowie gemischte (lobulär/septal) Pannikulitis nachgewiesen werden. Es kommt zu einer Bindegewebsvermehrung. Die Histopathologie wird im Verlauf dieser Arbeit im Detail beschrieben (Haustein and Mittag, 2003; Mc Kee et al., 2005).

1.4 Epidemiologie der zirkumskripten Sklerodermie Die zirkumskripte Sklerodermie ist eine seltene Erkrankung, deren Inzidenz mit einer Häufigkeit von 27 pro 1 Millionen Einwohner angegeben wird (Peterson et al., 1997; Silman et al., 1988; Kreuter et al., 2009). An einer zirkumskripten Sklerodermie erkranken Frauen häufiger als Männer, die Ratio beträgt 2,6-6:1 (Silman and Black, 1988; Kreuter et al., 2009). 9

1.5 Ätiologie der zirkumskripten Sklerodermie Die Pathoätiologie der zirkumskripten Sklerodermie ist ein multifaktorieller Prozess, der bisher nicht endgültig geklärt ist (Fett and Werth, 2011; Kreuter, 2012). Diskutiert werden prädisponierende Faktoren wie körperliche Traumata, verschiedene Medikamente, Infektionskrankheiten oder autoimmunologische Prozesse (Blaszczyk et al., 1996; Fett and Werth, 2011). Sie könnten über eine Mikrozirkulationsstörung zu einer vermehrten Freisetzung von Adhäsionsmolekülen führen (Kreuter, 2012).

1.5.1 Trauma In zwei großen retrospektiven Studien konnte gezeigt werden, dass die Anamnese betroffener Patienten in bis zu 12% unterschiedliche körperliche Traumata als möglichen Auslösemechanismus ergab (Zulian et al., 2006; Christen-Zaech et al., 2008). So fanden sich Morphea-typische Läsionen nach diversen Impfungen (Masern, Mumps, Diphtherie, Tetanus, Keuchhusten, Hepatitis B) ebenso wie nach Vitamin-B12 oder Kalium–Injektionen (Torrelo et al., 2006; Ho et al., 2004). Diskutiert wurde, dass durch den Einstich selber oder durch die injizierten Vakzine ein überschießender Heilungsprozess angestoßen worden war.

1.5.2 Radiatio In der Literatur fanden sich verschiedene Fallbeschreibungen, in denen von einer neu aufgetretenen zirkumskripten Sklerodermie in Folge einer Radiotherapie berichtet worden war (Herrmann et al., 2009; Fett and Werth, 2011).

1.5.3 Medikamente Es werden Medikamente verschiedener Wirkstoffgruppen als mögliche Auslöser einer zirkumskripten Sklerodermie diskutiert (z.B. Bisoprolol, Bleomycin, Peplomycin, D-Penicillamine, Bromocriptine, L-5-Hydroxytryptophane in Kombination mit Carbidopa, Pentazozine, Balicabtib, Ibuprofen (Peroni et al., 2008; Fett and Werth, 2011). 10

1.5.4 Infektion In der Vergangenheit wurde oftmals ein Zusammenhang zwischen einer Infektion mit Borrelia burgdorferi und der klinische Manifestation einer Morphea diskutiert. So fand z.B. die Arbeitsgruppe um Eisendle in 51% ihres Patientenguts mit einer zirkumskripten Sklerodermie eine positive Borrelienserologie (Eisendle et al., 2007). Die Daten sind aber insgesamt widersprüchlich und eindeutige Beweise für einen pathogenetischen Zusammenhang zwischen einer Infektion mit Borrelia burgdorferi und der zirkumskripten Sklerodermie fehlt bislang (Buechner et al., 1993; Kreuter et al., 2009).

1.6 Klassifikation der zirkumskripten Sklerodermie Entsprechend dem breiten klinischen Spektrum der zirkumskripten Sklerodermie wurden in der Vergangenheit verschieden Klassifikationen vorgeschlagen (Kreuter et al., 2009). Im Jahre 1930 erfolgte durch O. Leary und Nomlands eine erste Einteilung der kutanen und systemischen Sklerodermie (O.Leary and Nomland, 1930). Es folgten eine Reihe weiterer Klassifikationen (Jablonska and Blaszczyk, 2004; Tuffanelli and Winkelmann, 1955; Schachter, 1989; Peterson et al., 1995). In 2008 wurde in der Leitlinie zur Diagnostik und Therapie der zirkumskripten Sklerodermie der Deutschen Dermatologischen Gesellschaft eine Klassifikation vorgeschlagen, welche das Ausmaß, die Ausbreitung und die Tiefe des fibrotischen Prozesses berücksichtigt (Kreuter et al., 2009; Kreuter et al., 2012). Hieraus resultiert eine Einteilung in die vier Hauptformen "limitiert, generalisiert, linear und tief". Vorteil dieser einfachen Klassifikation ist der eindeutige Bezug zu den therapeutischen Empfehlungen dieser Leitlinie.

1.6.1 Übersicht der Klassifikation Limitierte Form 

Morphea (Plaque-Typ);



Morphea guttata (Sonderform der Morphea);



Atrophodermia Pierini-Pasini (Sonderform der Morphea).

11

Generalisierte Form 

Generalisierte zirkumskripte Sklerodermie (Befall mindestens dreier anatomischer Areale);



Disabling pansclerotic morphea (schwer verlaufende Sonderform);



Eosinophile Fasziitis (Sonderform mit führendem Befall der Faszie).

Lineare Form 

Lineare zirkumskripte Sklerodermie (meist Befall der Extremitäten);



Linerare zirkumskripte Sklerodermie vom Typ ,,en coup de sabre“;



Progressive fasziale Hemiatrophie (Synonym Parry Romberg Syndrom).

Tiefe Form (Leitlinie zirkumskripte Sklerodermie 2009)

1.6.2.1 Die limitierte Sklerodermie Unterteilt wird die limitierte zirkumskripte Sklerodermie in die Subtypen Plaque Morphea, Morphea guttata und Atrophodermia of Pierini-Pasini.

1.6.2.2 Die Plaque Morphea Die Plaque Morphea ist die häufigste Form der zirkumskripten Sklerodermie und kommt in 70% beim Erwachsenen und in ca. 30% bei Kindern vor (Zulian et al., 2006). Makroskopisch zeigen sich in charakteristischer Weise größer als 1 cm durchmessende Herde, die in der Regel mindestens an ein bis zwei Lokalisationen auftreten. Die Prädilektionsstellen sind der Rumpf, insbesondere in der Submammärregion und der Übergang von der Hüft- zur Inguinalregion (Kreuter et al., 2009; Peterson et al., 1995). Je nach Phase der Erkrankungen kommt es zu spezifischen Hautveränderungen. In der Frühphase der Erkrankungen imponieren makroskopisch erythematöse, ovale Läsionen, die in einem elfenbeinfarbigen Kolorit erscheinen. Im späteren Verlauf kommt es zu einer Sklerose der betroffenen Hautareale. Ein lila erscheinender Randsaum kennzeichnet die Aktivität der Erkrankung (Peterson et al., 1995). 12

1.6.2.3 Die Guttata Morphea Makroskopisch zeigen sich bei dieser Form der Morphea disseminierte, rumpfbetonte, weißlich-gelbliche, sklerotische, ca. 2-10mm messende Makulae. Initial findet sich ein schwaches Erythem, gefolgt von einer milden Induration mit Hypooder Hyperpigmentation. Die Genitalregion wird ausgespart (Peterson et al., 1995).

1.6.2.4 Atrophodermia of Pierini-Pasini Hierbei handelt es sich möglicherweise um eine frühe abortive Form der GuttataForm (Kreuter et al., 2009). Sie wurde erstmals im Jahre 1923 durch Pasini sowie im Jahre 1936 von Pierini beschrieben. Synonym bezeichnete Jablonska diese Erkrankung als ,,superfizielle Morphea“ (Jablonska and Blaszczyk, 2004). Charakteristikum der Atrophodermia of Pierini-Pasini sind stammbetonte, hyperpigmentierte und atrophische Läsionen, die klinisch asymptomatisch sind. Mikroskopisch zeigt sich eine superfizielle Dermatitis, wohingegen eine Sklerose oftmals fehlt (Mc Niff et al., 1999).

1.6.3.1 Generalisierte Form der zirkumskripten Sklerodermie Diese Form liegt vor, wenn mindestens drei anatomische Lokalisationen (am häufigsten: Rumpf, Oberschenkel, Lumbosakralregion), betroffen sind. Die Hauterscheinungen treten oftmals symmetrisch auf. Die sich häufig in verschiedenen Stadien der Erkrankung befindlichen Plaques können zu größeren Arealen konfluieren (Kreuter et al., 2009).

1.6.3.2 Eosinophile Fasziitis Die eosinophile Fasziitis (Shulman Syndrom) wird zumeist der zirkumskripten Sklerodermie zugeordnet. Dieser Subtyp führt zu einer plötzlichen Sklerose tiefer gelegener Bindegewebsstrukturen. Je nach Schwere der Erkrankung kann es zu Indurationen der Haut kommen. Kontrakturen der Extremitäten sind üblich. Klinische Symptome wie das Karpaltunnelsyndrom, Arthralgien oder Myalgien treten häufig auf (Bielsa and Ariza, 2007). Klinisch imponieren ödematöse, livide verfärbte Schwellungen vor allem der proximalen Extremitäten. Im Differentialblutbild 13

zeigt sich eine Eosinophilie. Gehäuft treten hämolytische Anämien, Thrombozytopenien, eine BSG-Beschleunigung und/oder einer Hypergammaglobulinämie auf. Eine Assoziation der eosinophilen Fasziitis zu hämatoonkologischen Erkrankungen wird beobachtet (Doyle and Ginsburg, 1989; Person and Su, 1981).

1.6.3.3 Disabling pansclerotic morphea Als sehr seltene Form der zirkumskripten Sklerodermie kann die ,,Disabling pansclerotic morphea“ bezeichnet werden. Die erstmalig im Jahre 1980 durch die Arbeitsgruppe um Diaz-Peres beschriebene, sehr aggressive Form der zirkumskripten Sklerodermie, tritt vor allem in der Adoleszenz auf. Charakteristisch sind generalisiert auftretende, sklerotische Veränderungen, die von der Haut bis auf den Knochen reichen können. Erheblich Veränderungen, vor allem an den Extremitäten, führen zu Kontrakturen. Oft kommt es zu Wundheilungsstörungen. In einigen Fällen wurde ein viszeraler Befall mit Lungen-, Herz- und Nierenbeteiligung beschrieben (Diaz- Peres et al., 1980; Forsea et al., 2008).

1.6.4.1 Lineare Form der zirkumskripten Sklerodermie Die hauptsächlich (60%) in der Kindheit und Adoleszenz vorkommende lineare Form ist durch lineare, indurierte Plaques der Dermis, des subkutanen Fettgewebes, der Muskeln und Knochen gekennzeichnet (Vierra and Cunningham, 1999; Peterson et al., 1995). Bei massivem Befall der Extremitäten kann es zu Atrophien und Gelenkkontrakturen kommen. Die lineare Form der zirkumskripten Sklerodermie unterteilt sich desweiteren in die beiden Subtypen „en coup de sabre“ und die „progressive faziale Hemiatrophie“.

1.6.4.2 Zirkumskripte Sklerodermie vom Typ „en coup de sabre“ Die bekannteste Form der ZS ist die vom Typ „en coup de sabre“. Sie tritt zumeist im Gesicht und Haarbereich auf. Makroskopisch besteht der Anschein, als habe man den Patienten mit einem Säbelhieb an der Stirn gestreift. Im Bereich der Läsionen kann es zu tiefen Indurationen kommen. Nicht selten bestehen zentralnervöse Beteiligungen (Blaszczyk et al., 2003). 14

1.6.4.3 Progressive faziale Hemiatrophie Eine verwandte Erkrankung ist die sog. progressive faziale Hemiatrophie (Synonym: Hemiatrophia faciei oder Parry Romberg-Syndrom). Bezeichnend ist bei diesem Subtyp der linearen Form der zirkumskripten Sklerodermie eine primär atrophische Umwandlung des betroffenen subkutanen Gewebes, der Muskulatur und des Knochens, vornehmlich im Gesichtsbereich. Eine fibrotische Veränderung des Gewebes tritt kaum auf. Die Erkrankung betrifft vornehmlich das Jugend- und Kindesalter (Sommer et al., 2006; Tollefson and Witman, 2007). Das gleichzeitige Auftreten einer linearen zirkumskripten Sklerodermie vom Typ „en coup de sabre“ und der progressiven fazialen Hemiatrophie wird in der Literatur mit bis zu 40% angegeben, was für eine gemeinsame Pathogenese spricht (Kreuter et al., 2009; Jablonska, 1975).

1.6.5.1 Tiefe Form der zirkumskripten Sklerodermie (Deep Morphea) Bei der mit Abstand (5%) am seltensten vorkommenden Deep morphea sind primär die tiefe Dermis, das subkutane Fettgewebe, die Faszie oder der darunterliegende Muskel betroffen. Die Läsionen treten häufig symmetrisch auf (Person and Su, 1981; Bielsa and Ariza, 2007; Peterson et al., 1995). Eine Diagnosestellung erfolgt mikroskopisch mittels tiefer Biopsie, vorzugsweise aus makroskopischen frischen, entzündlichen Läsionen (Kreuter, 2009). Die Morphea kann eine systemische, autoimmune Komponente besitzen (Leitenberg et al., 2009). Es wurden Überlappungen mit anderen Autoimmunerkrankungen wie z.B. dem systemischen Lupus Erythematodes, der Vitiligo, der Autoimmunhepatitis, der Hashimoto Thyreoiditis und der Myasthenia gravis beobachtet (Zulian, 2004).

1.7 Diagnostik der zirkumskripten Sklerodermie 1.7.1 Laborchemische Parameter Laborchemisch finden sich bei der zirkumskripten Sklerodermie ggf. unspezifische Entzündungszeichen wie eine erhöhte Blutsenkungsgeschwindigkeit und eine Erhöhung von akuten Phase Proteinen.

15

1.7.2 Antikörperprofile bei der zirkumskripten Sklerodermie Der Fokus von verschiedenen Arbeitsgruppen in den letzten Jahren galt dem Nachweis von Antikörper im Serum. Allerdings existieren im Gegensatz zur systemischen Sklerodermie bei der zirkumskripten Sklerodermie keine charakteristischen serologischen Parameter. Nennenswert sind in diesem Zusammenhang dennoch die antinukleären Antikörper (ANA), Antikörper gegen Einzelstrang-DNA (Anti-ss-DNA-AK) sowie anti-Histone Antikörper bei der lineare zirkumskripte Sklerodermie (Sato et al., 1993; Takehara et al., 1983; Zulian, 2004; Takehara and Sato, 2005). Im Jahre 1977 beschrieben Rodnan und Kollegen als erste den Nachweis von Anti-Einzel-Strang DNS-AK bei Patienten mit einer linearen zirkumskripten Sklerodermie (Rodnan et al., 1977). Einige Jahre später fand die Arbeitsgruppe um Falanga eine positive Korrelation von Antikörpertitern und bestehenden Gelenkkontrakturen (Falanga et al., 1986). Im Jahre 1983 gelang der Arbeitsgruppe von Takahara als erster der Nachweis von ANA´s in menschlichen Zellkulturen bei Patienten mit einer lokalisierten Sklerodermie mittels indirekter Immunfloureszenz (Takehara et al., 1983). In weiteren Studien konnte gezeigt werden, dass ANA´s bei 47-80% der Patienten mit einer lokalisierten Sklerodermie nachgewiesen werden können (Sato et al., 1993). Sie finden sich bei Erwachsenen häufiger als bei Kindern (Leitenberg et al., 2009). Der Nachweis von Antihiston-Antikörpern bei Patienten mit einer lokalisierten Sklerodermie (speziell der Histone H1 und H3) gelang der Arbeitsgruppe um Sato im Jahre 1993 durch ELISA- sowie durch Immunoblotting (Sato et al., 1993). Dabei korrelierte der Antihiston-Antikörpertiter mit dem Anti-ss-DNS-Antikörpertiter, der Krankheitsaktivität sowie der Anzahl der Läsionen und der betroffenen Körperregionen (Sato et al., 2004). Ein hoher Antihiston-Antikörpertiter ist in ca. 90 % initial ein Marker für den medikamentös induzierten Lupus Erythematodes (Fritzler and Tan, 1978). Mittels indirekter Immunfluoreszenz konnte in 2001 erstmals der Nachweis von Anti-U1 RNP bei Patienten mit lokalisierter Sklerodermie im Serum erbracht werden. Initial galt der U1 RNP Antikörper als serologischer Marker für Mischkollagenosen (Yamane et al., 2001). Bei Gelenkbeteiligung im Rahmen einer zirkumskripten Sklerodermie der Extremitäten kann bei 25-40% der Patienten laborchemisch ein positiver Rheumafaktor nachgewiesen werden (Kreuter et al., 2009). 16

Der Anti-Topoisomerase 1 Antikörper ist spezifisch für die progressive systemische Sklerodermie und lässt sich bei der zirkumskripten Sklerodermie nicht nachweisen (Sato et al., 1993). Jedoch konnte bei 76% der Patienten mit einer lokalisierten Sklerodermie, vor allem bei der generalisierten Morphea (85%) ein erhöhter Titer des Anti-Topoisomerase 2 Antikörpers nachgewiesen werden (Sato et al., 1993). Antiphospholipid Antikörper konnten in einer Studie von Sato bei 24% der Patienten mit einer generalisierten zirkumskripten Sklerodermie nachgewiesen werden (Sato et al., 1993). Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Bestimmung und der Nachweis von Antikörpern bei der zirkumskripten Sklerodermie zurzeit Gegenstand intensiver Forschungsanstrengungen sind, mit dem Ziel eine spezifische Diagnostik und ggf. Therapie zu ermöglichen. Vermutlich handelt es sich bei den bisher ermittelten Antikörpern um unspezifische Autoimmunphänomene.

1.8 Allgemeine Histopathologie der zirkumskripten Sklerodermie Histologisch lassen sich bei der zirkumskripten Sklerodermie unterschiedliche Phasen beobachten. Es wird eine Unterteilung in eine frühe entzündliche Phase, eine intermediäre Phase und eine späte fibrotische Phase vorgenommen. Im Anfangsstadium zeigt sich ein dichtes lymphohistozytäres Entzündungsinfiltrat der oberflächlichen, je nach Krankheitstyp auch der tiefen Gefäße. Zudem erkennt man eine endotheliale Zellschwellung, eine Reduktion der elastischen Fasern und verdickte Kollagenfaserbündel. In der intermediären Phase infiltrieren Entzündungszellen oftmals die tiefe Dermis sowie das subkutane Fettgewebe, wobei sich ggf. eine septale Pannikulitis sowie verdickte Fettgewebstrabekel beobachten lassen. Große Bereiche des subkutanen Fettgewebes sind durch neu geformte Kollagenfaserbündel charakterisiert. Im späten sklerotischen Stadium zeigen sich eine Vermehrung des dermalen Bindegewebes und eine Verdrängung des subkutanen Fettgewebes. Typisch sind verbreitete Kollagenfaserbündel, die parallel zur Hautoberfläche verlaufen. Epidermal findet sich jetzt ein nur noch geringes Entzündungsinfiltrat. Es kommt zu einer Atrophie der Hautanhangsgebilde (Kreuter, 2012; Vierra and Cunningham, 1999; Haustein and Mittag, 2003; Bielsa and Ariza, 2007; Fett and Werth, 2011) 17

1.9 Pathogenese der zirkumskripten Sklerodermie In der Literatur gibt es Hinweise, dass in den entzündlichen Infiltraten durch Entzündungszellen Zytokine (im wesentlichen TFG-β, PDGF sowie CTGF) freigesetzt werden, die dann zu einer Aktivierung von mesenchymalen Zellen führen (Jimenez et al., 1996; Leask and Abraham, 2004). Weitestgehend unklar ist, ob diese Zytokine zu einer Aktivierung bereits vorhandener Fibroblasten oder aber zur Differenzierung von mesenchymalen Vorläuferzellen aus dem Gewebe bzw. deren Zirkulation beitragen (Kreuter, 2012). Die Arbeitsgruppe um Higasi geht davon aus, dass die endotheliale Schädigung neben der verstärkten Abgabe von chemotaktischen Zytokinen auch zu einer vermehrten Expression vaskulärer Zelladhäsionsmolekülen (VACAM1, ICAM 1 und E-Selectin) führt. Dieser Vorgang rekrutiert T-Zellen, die wiederum profibrotische Zytokine (IL4/6 und TGFß) produzieren wodurch weitere eosinophile Granulozyten, CD4-positive T-Zellen und Makrophagen angelockt werden (Salmon-Her et al., 1996). Die Hochregulation von TGFß führt durch Fibroblastenaktivierung zu einer vermehrten Synthese von Kollagen, Fibronektin und Proteoglykan (Kubo et al., 2001). Gleichzeitig bewirkt TGFß eine verminderte Proteasenproduktion und einen Anstieg von Proteaseinhibitoren, was zu einem Ungleichgewicht in der Kollagensynthese und deren Abbau führt. Es gibt drei TGF-Rezeptoren. In Hautläsionen von Patienten mit ZS konnten die Rezeptortypen 1 und 2 nachgewiesen werden (Kubo et al., 2001). Die Inhibierung des Kollagenabbaus wird durch Anti-MMP Antikörper vermittelt. Bei Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie sind Autoantikörper gegen die Anti-MMP-Antikörper nachgewiesen worden, die zur Inhibierung der MMP1Kollagenase fähig sind (Kreuter, 2012; Tomimura et al., 2008). Zudem scheint der Insulin-like growth factor (IGF) in der Pathogenese der Morphea eine Rolle zu spielen. Der IGF fördert die Kollagensynthese sowie die Fibroblastenrekrutierung und erhöht damit die extrazelluläre Matrix (Fawzi et al., 2008). Man geht davon aus, dass bei der zirkumskripten Sklerodermie eine Autoimmunerkrankung mit Beteiligung einer zellulären und humoralen Immunantwort im Rahmen einer Aktivierung des adaptiven Immunsystems stattfindet (Takehara and Sato, 2005; Leitenberger et al., 2009). Immunopathologisch konnten im Serum von Patienten mit einer lokalisierten Sklerodermie hyperreaktive T- und B-Zellen nachgewiesen werden. Vor allem zeigte sich eine erhöhte Aktivität von CD818

positiven T-Zellen im Serum ähnlich wie im Patientengut mit einer systemischen Sklerodermie. Demgegenüber war die Anzahl CD4-positiver Zellen im Serum signifikant höher als bei Patienten, die an einer systemischen Sklerodermie erkrankt waren (Sato et al., 1996). Durch CD30-positive T-Zellen wird eine Antikörperproduktion von spezifischen B-Zellen induziert, was auf eine Th2 Immunantwort schließen lässt. Der Anti-Histon Antikörper IGM korreliert positiv mit CD30 (Sato et al., 1996). Der IL 2 Rezeptor scheint als Marker für die Krankheitsaktivität zu dienen (Vierra and Cunningham, 1999). Diverse Zytokine und lösliche Faktoren wurden bei der zirkumskripten Sklerodermie zur Beurteilung des Verlaufes und der Krankheitsaktivität beschrieben, haben aber sich aber bislang im klinischen Alltag nicht etabliert (Ihn et al., 1995; Ihn et al., 2000; Kreuter et al., 2009).

1.10 Therapiemöglichkeiten Bei der zirkumskripten Sklerodermie existieren bisher keine internationalen Therapieleitlinien sowie eine kausale Therapie (Kreuter et al., 2007; 2009). Es gibt jedoch effektive Behandlungsansätze vor allem im akuten entzündlichen Stadium. Die Therapie ist abhängig von der Krankheitsaktivität, dem Subtyp und dem Stadium der Erkrankung (Kreuter et al., 2009). Optional bestehen therapeutische Ansätze topisch, systemisch sowie der ultravioletten (UV) Phototherapie (Kreuter, 2012).

1.10.1 Topische Therapie Bei der topischen Therapie verwendet man mittel- bis hochpotente Steroide, die bis zu 3 Monate lang täglich auf aktive Läsionen aufgetragen werden sollten. Intraläsional applizierte Glukokortikosteroide werden bei der ,,en coup de sabre“ Form im aktiven Randbereich appliziert. Die Wirksamkeit ist bisher in Studien nicht belegt, dennoch sind topische Steroide “ State of the Art“ bei oberflächlichen Formen der ZS. In einer Arbeit wurde die Wirksamkeit von topischem Calcipotriol allein und in Kombination mit UVA1-Phototherapie untersucht. Angewendet wurde diese Therapieform über 3 Monate. Sie ist vor allem bei der oberflächlichen Form der zirkumskripten Sklerodermie vom Plaque Typ wirksam (Cunningham et al., 1998; Kreuter et al., 2001). 19

Mancuso und Berdondini überprüften in einer kleinen Pilotstudie die Wirksamkeit von Tacrolimus 0,1% bei der Morphea. Es konnte ein Rückgang des Erythems und eine Sklerosereduktion im Rahmen der dreimonatigen Therapiedauer beobachtet werden (Mancuso et al., 2005). Imiquimod führt über einer Induktion von Interferon zu einer Hemmung der TGF-ß und wirkt so anti-fibrotisch (Dytoc et al., 2005). Diese Therapieform wird aufgrund der schwachen Datenlagen derzeit nicht von führenden Experten empfohlen (Kreuter et al., 2009). Ebenso zeigte die Studie der Arbeitsgruppe um Hunzelmann in der Verwendung von intraläsional appliziertem Interferon keinen signifikanten Therapieerfolg (Hunzelmann et al., 1997).

1.10.2 Systemische Therapie Der Einsatz von systemischen Steroiden ist der frühen Phase schwerer Verlaufsformen vorbehalten. Etabliert hat sich eine Kombinationstherapie aus systemischen Steroiden und Methotrexat (Uziel et al., 2000; Kreuter et al., 2005). Nach aktueller Studienlage werden Substanzen wie Calcitriol, D-Penizillamin und Penizillin aufgrund des Nebenwirkungsspektrums sowie des mangelhaften Wirksamkeitsnachweis nicht mehr empfohlen. In einzelnen Fallberichten wurde von einem erfolgreichen Einsatz von Cyclosporin A, Azathioprin, Chloroquin, Phenytoin, Colchicin, Retinoide, extrakorporaler Photorese, Plasmapherese oder intravenöser Immunglobuline berichtet.

1.10.3 Phototherapie Ein effektives Behandlungskonzept in der Behandlung sklerotischer Hauterkrankungen ist die Anwendung der Phototherapie mit ultravioletten Strahlen (Kreuter and Gamblicher, 2008; Kreuter et al., 2009; Kreuter, 2012). Langwellige UVA Strahlen dringen in die Dermis ein und zeigen eine antiinflammatorische und antifibrotische Wirkung (Breuckmann et al., 2004; Sunderkötter et al., 2006). Die Arbeitsgruppe um Stein erbrachte in 1989 (Stein et al., 1989) erstmalig den Nachweis, dass UVB-Strahlung in vitro die Matrix-Metalloproteinase-1 induzieren kann und somit zu einem Kollagenabbau führt. Scharffetter wies 1991 eine Induktion der interstitiellen Kollagenase durch UVA Bestrahlung nach (Scharffetter et al., 1991). Der antiinflammatorische Effekt wird durch die von den UV-Strahlen ausge20

löste Apoptose von T-Zellen, die Depletion von Langerhanszellen und die Modulation pro-inflammatorischer Zytokine bewirkt (Kreuter et al., 2009). Aufgrund der Eindringtiefe ist die Phototherapie damit erste Wahl in der Behandlung der limitierten Form der zirkumskripten Sklerodermie und kommt für Formen mit Beteiligung tiefer gelegener Strukturen eher nicht in Frage. Bei der PUVA-Therapie werden photosensibilisierte Psoralene entweder oral gegeben oder topisch verabreicht. Diese Therapieform hat sich vor allem in der frühen entzündlichen Phase der limitierten zirkumskripten Sklerodermie etabliert. Bekannt ist zudem der Einsatz von Breitband-UVA (320-420nm). Vergleichsuntersuchungen mit anderen UV-Modalitäten existieren bislang nicht (Kreuter et al., 2006). Als gute und effektive Behandlungsoption hat sich die Verwendung von UVA-1 Phototherapie bei der ZS etabliert (Kreuter, 2012). Es existieren drei verschiedene Dossisregime, low-dose UVA1 (10-20 J/cm²), medium-dose UVA1 (30- 50 J/cm²), und high-dose UVA1 (130 J/cm²) (Kreuter et al., 2006; Kreuter et al., 2008, Kreuter et al., 2009). In verschiedenen Studien wurden die einzelnen Dosisregime hinsichtlich ihrer Wirksamkeit verglichen. Als effektiv erwies sich zudem in einer Studie von Stege (Stege et al., 1997) die high-dose UVA Therapie. In darauffolgenden prospektiven Studien erwies sich low-dose als auch medium-dose UVA1 als wirksamer (Kreuter et al., 2009). Kreuter und Kollegen wiesen 2006 in ihrer randomisiert-kontrollierten Studie die erhöhte Wirksamkeit von medium-dose UVA1 nach (Kreuter et al., 2006). Die Behandlung sollte drei- fünfmal wöchentlich für insgesamt 40 Sitzungen statt finden (Kreuter et al., 2006; Kreuter et al., 2009). Auch wenn keine kontrollierten Studien vorhanden sind, so ist bei den verschiedenen Sklerodermieformen in jedem Fall eine frühzeitige und konsequente Physiotherapie empfehlenswert um Kontrakturen vorzubeugen.

1.10.4 Chirurgische Therapie Chirurgische Eingriffe sind ausschließlich bei der linearen zirkumskripten Sklerodermie angezeigt. Je nach Ausmaß der Kontrakturen kann eine Intervention mittels Sehnenverlängerung wegen Bewegungseinschränkung, Transplantatdeckung bei Substanzdefekt und aus kosmetischen Gründen im inaktiven Erkrankungsstadium erfolgen (Kreuter et al., 2009). 21

1.11 Die Pannikulitis 1.11.1 Definition der Pannikulitis Der Begriff Pannikulitis beschreibt eine heterogene Gruppe entzündlicher Erkrankungen, welche das Unterhautfettgewebe betreffen. Immer ist eine Biopsie zur histopathologischen Diagnosesicherung nötig (Requena, 2008; Requena and Yus, 2001). Chemische und mechanische Reize sowie diverse Noxen können zu einem Untergang von Fettzellen unter Freisetzung von Fettsäuren führen. Der entzündliche Vorgang im Fettgewebe ist ein dynamischer Prozess. Je nach Stadium können verschiedene histopathologische Charakteristika nachgewiesen werden (Patterson, 2003; Requena and Yus, 2001). Häufig ist die Pannikulitis eine Begleitmanifestation bei bestehenden Erkrankungen des rheumatischen oder autoimmunologischen Formenkreises.

1.11.2 Klinisches Erscheinungsbild der Pannikulitis In der Vergangenheit war die bekannteste Erkrankung des subkutanen Fettgewebes die im Jahre 1892 beschriebene Pfeifer-Weber-Christian Erkrankung (Pfeifer, 1892; Brill, 1936; White and Winkelmann, 1998). Klinisch imponiert hier ein Spektrum aus körperlichem Schwächegefühl, wiederholtem Erbrechen, einer ausgeprägten Müdigkeit, rheumatoiden Gelenkbeschwerden und Fieber. Die Inspektion der Haut ergibt multiple, unterschiedlich große, druckschmerzhafte, subkutane Knoten, die mit einer Rötung und Schwellung der bedeckenden Haut einhergehen. Die Hautaffektionen heilen nur langsam ab und hinterlassen eine Hauteinziehung infolge der Vernarbung im subkutanen Fettgewebe (Requena, 2008).

1.12 Klassifikation und Einteilung der Pannikulitis Eine allgemein akzeptierte Klassifikation der Pannikulitis existiert nicht, was in der Vergangenheit dazu führte, dass von Pathologen und Klinikern für ein und dieselbe Erkrankung verschiedene Bezeichnungen verwendet wurden. Etabliert hat sich in den letzten Jahren eine Klassifikation nach histologischen sowie ätiologischen Kriterien (Patterson, 2003). Einige Autoren nehmen an, dass eine Unterteilung in 22

eine lobuläre und septale Pannikulits diagnostisch hilfreich sein könnte. Da jedoch häufig Mischbilder beobachtet werden, ist die Interpretation mitunter schwierig und eine eindeutige Diagnose nicht immer zu stellen. Histopathologisch erfolgt zudem eine Unterteilung in eine Form mit und ohne begleitende Vaskulitis (Requena and Yus, 2001).

1.12.1 Lobuläre Pannikulitis 

Ohne Vaskulitis: o

Pannikulitis nodularis nonsuppurativa febrilis et recidivans (PfeifferWeber-Christian-Syndrom);

o

Lipogranulomatosis subcutanea;

o

Pannikulitis, pankreatische;

o

Physikalische/traumatische/artifizielle Pannikulitis;

o

o

o



Kältepannikulitis;



Druckpannikulitis;



Pannikulitis nach Injektionen;



Pannikulitis durch Artefakte.

Pannikulitis mit "needle shaped clefts" in Lipozyten: 

Sclerema adiposum neonatorum;



Adiponecrosis subcutanea neonatorum;



Pannikulitis, poststeroidale.

Lobuläre Pannikulitiden bei Kollagenosen: 

Lupus-Pannikulitis;



Systemische Sklerodermie;



Morphea;



Pannikulitis bei Dermatomyositis.

Lobuläre Pannikulitis bei sonstigen Erkrankungen: 

Sarkoidose;



Granuloma anulare;



Necrobiosis lipoidica; 23



Pannikulitis bei chronischer Polyarthritis (rheumatoide Arthritis);



o

o



Pannikulitis calcificans (Niereninsuffizienz).

Pannikulitis bei malignen Systemerkrankungen: 

Pannikulitisches, kutanes T-Zell-Lymphom;



Leukämien der Haut;



Pannikulitis, histiozytäre, zytophagische.

Pannikulitis durch Infektionen: 

Pannikulitis, bakterielle;



Pannikulitis, mykotische.

Mit Vaskulitis: o

Erythema induratum Bazin (Nodularvaskulitis).

1.12.2 Septale Pannikulitis 



Ohne Vaskulitis: o

Erythema nodosum;

o

Necrobiosis lipoidica;

o

Eosinophile Fasziitis;

o

AAT-Mangel-assoziierte Pannikulitis;

o

Dermatoliposklerose.

Mit Vaskulitis: o

Polyarteriitis nodosa, systemische;

o

Polyarteriitis nodosa, kutane;

o

Thrombophlebitis migrans.

(Altmeyer and Bacharach-Buhles, 2002) 24

Wir verzichteten auf eine detaillierte Beschreibung der einzelnen Erkrankungen und richten unser Augenmerk vor allem auf die septale Pannikulitis im Rahmen der zirkumskripten Sklerodermie sowie des Erythema nodosum. Diese beiden Formen waren Gegenstand unserer experimentellen Arbeit.

1.13 Die Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie Die Morphea, vor allem die Morphea profunda, ist durch eine subkutane Entzündungsreaktion charakterisiert und unterscheidet sie damit von anderen Formen der Sklerodermie (Su and Person, 1981). Bei dieser tiefen Form der Morphea sind Dermis, Subkutis, Faszien sowie die superfizielle Muskulatur betroffen (Peterson et al., 1995). Primär sind das Fettgewebe sowie die Faszien durch entzündliche Infiltrate involviert. Es handelt sich um eine septale Pannikulitis. Eine detaillierte Differenzierung der Entzündungszellen im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie ist bisher noch nicht untersucht worden und ist Gegenstand dieser Arbeit. Bei der zirkumskripten Sklerodermie werden unterschiedliche Auslöser diskutiert, die bei einer entsprechenden genetischen Prädisposition zu einer immunologisch getriggerten entzündlichen Reaktion mit anschließend gestörter Regulation des Bindegewebs-Stoffwechsels und der Fibroblastenaktivität führen (Kreuter, 2012, Kreuter et al., 2009; Gabrielli et al., 2009).

1.14 Das Erythema nodosum 1.14.1 Definition des Erythema nodosum Erstmalig von William im Jahre 1798 beschrieben, handelt es beim Erythema nodosum um eine akut verlaufende, allergische, hyperergische und schmerzhafte Hauterkrankung. Das Erythema nodosum ist die häufigste klinisch-pathologische Variante einer septalen Pannikulitis (Requena and Yus, 2008; Requena and Requena, 2002; Pink and Barker, 2012).

25

1.15 Epidemiologie und Ätiologie Die Prävalenz in Mitteleuropa beträgt 100-200/100000 Einwohner pro Jahr, die Inzidenz 2-8/10000 Einwohner pro Jahr. Frauen sind in der Regel (3 bis 5x) häufiger betroffen. Das Hauptmanifestationsalter liegt zwischen dem 15. und 30. Lebensjahr. Das Erythema nodosum ist ein poliätiologisches Krankheitsbild. Eine Vielzahl von Triggerfaktoren sowie geographische Unterschiede werden diskutiert (GarcíaPorrúa et al., 2000). Als häufigste Ursache bei Kindern und Jugendlichen kommt eine Infektion der oberen Atemwege mit ß-hämolysierenden Streptokokken in Betracht. Ca. 2 bis 3 Wochen nach Krankheitsbeginn sind die typischen Hautläsionen nachweisbar (García-Porrúa et al., 2000). Das Erythema nodosum ist bei der Tuberkulose und dem rheumatischen Fieber ein Epiphänomen. Die Sarkoidose ist in 1/3 der Fälle mit einem Erythema nodosum assoziiert (Marcoval et al., 2003). Bei Erwachsenen findet sich ein gehäuftes Auftreten bei Patienten mit chronisch entzündlichen Darmerkrankungen, wobei die Hautläsionen häufiger bei der Colitis ulcerosa als beim Morbus Crohn beobachtet werden (Durand et al., 1991; McCallum and Kinmont, 1968). Klinisch erscheinen auch beim Morbus Behçet die für das Erythema nodosum typischen Hautläsionen. Es handelt sich hierbei histopathologisch meist um eine lobuläre Pannikulitis mit Leukozytoklasten und einer begleitenden lymphatischen Vaskulitis (Chun et al., 1989; Kim and LeBoit, 2000). Auch im Rahmen von malignen Grunderkrankungen wie dem Morbus Hodgkin, verschiedener anderer Lymphome und diverser solider Tumore kann es zu einer entzündlichen Reaktion der Haut im Sinne eines Erythema nodosum kommen (Kluger et al., 2011; Perez et al., 2006; Lin et al., 2004).

1.16 Klinisches Erscheinungsbild des Erythema nodosum Die Erkrankung ist gekennzeichnet durch den akuten Beginn und dem typischen klinischen Bild mit plötzlich auftretendem, symmetrisch verteilten, schmerzhaft tastbaren Knoten bevorzugt an den Streckseiten der Unterschenkel (Moll et al., 2005). Zu Beginn zeigen sich rötliche Plaques, die im Verlauf erhaben erscheinen und konfluieren. Im Verlauf imponiert dann ein Farbumschlag zu Gelb bis Grün, ähnlich einem abblassenden Hämatom. Die Abheilung findet ohne Narbenbildung oder Atrophie statt. Ulzerationen werden nicht beobachtet. Die Läsionen zeigen nicht selten eine Spontanheilung. Rezidive sind ungewöhnlich (Requena and Yus, 26

2008; Requena and Requena, 2002; Requena and Yus, 2007). In der akuten Krankheitsphase zeigen sich Prodromalerscheinungen wie Fieber, Gelenk- und Gastrointestinale Beschwerden. Zudem kann es zu einer begleitenden Lymphadenopathien, Hepatomegalien, Splenomegalien oder Pleuritiden kommen (Psychos et al., 2000).

1.17 Diagnostik des Erythema nodosum Eine detaillierte Anamnese und Evaluation der Grunderkrankung sind erforderlich. Laborchemisch sollte eine Bestimmung der Entzündungsfaktoren (CRP, Leukozyten, IL6 und BSG) sowie eine der Grunderkrankung angepasste Laboranalytik erfolgen (z.B. Antistreptolysintiter, Yersinienserologie) erfolgen (Requena and Yus, 2008; Requena and Requena, 2002).

1.18 Histologie des Erythema nodosum Bei dem Erythema nodosum handelt es sich histopathologisch um eine vorwiegend septale Pannikulitis ohne eine begleitende Vaskulitis (Requena and Yus, 2001). In der Frühphase der Läsionen findet man ein Ödem, Hämorrhagien und eine Neutrophilie. Aktivierte Neutrophile synthetisieren reaktiven Sauerstoff. Dies führt zur oxidativen Gewebszerstörung und fördert die Entzündungsreaktion im Gewebe. In seltenen Fällen zeigt sich ein dominant eosinophiles Zellinfiltrat (Winkelmann and Frigas, 1986). In dem Spätstadium beobachtet man verdickte, fibrotische Septen sowie periseptale Granulation. Es lassen sich Lymphozyten, Histiozyten und multiple Riesenzellen nachweisen (Förstrom and Winkelmann, 1977). Eine zentrale Fettgewebsnekrose kommt nicht vor. Sogenannte Miescher-Granulome sind pathognomonisch für das Erythema nodosum (Miescher, 1947; Miescher, 1951; Yus et al., 1989). Es handelt sich hierbei um septale, histiozytäre Granulome mit vielkernigen Riesenzellen in radiärer Anordnung um eine “zentrale Lücke“ (Moll et al., 2005). In der Frühphase des Erythema nodosum sind die Miescher-Granulome in den Septen umgeben von Neutrophilen. 27

1.19 Pathogenese des Erythema nodosum Das Erythema nodosum stellt eine unspezifische Hautreaktion auf eine große Vielfalt von Antigenen dar, was eine komplexe Immunreaktion voraussetzt. Wahrscheinlich liegt dem eine Typ III und/oder Typ IV Immunreaktion zugrunde. In den Läsionen lassen sich zirkulierende Immunkomplexe und eine Komplementaktivierung nachweisen (Hedfors and Norberg, 1974; Baldock and Catterall, 1975; Jones et al., 1976). Vermittelt durch Antigen-spezifische CD4-Zellen kommt es zu einer Freisetzung von Zytokinen sowie zu einer Rekrutierung von Makrophagen. Ein lokaler Gewebsschaden ist die Folge, der zu einer granulomatösen Entzündungsreaktion führt.

1.20 Therapiemöglichkeiten des Erythema nodosum Die Behandlung richtet sich nach der mit dem Erythema nodosum assoziierten Grunderkrankung. Eine symptomatische Therapie steht im Vordergrund. ASS und nichtsteroidale Antirheumatika wirken analgetisch sowie antipyretisch. Nach Ausschluss einer akuten bakteriellen oder viralen Infektion als Ursache können systemische Steroide verwendet werden. Einige Patienten profitierten von einer Behandlung mit Colchicin oder Hydroxychloroquin (Jarret and Goodfield, 1996).

1.21 Das Immunsystem im Rahmen einer Entzündung Es handelt sich um ein hocheffizientes biologisches Abwehrsystem und dient dem menschlichen Organismus als Schutz vor Krankheitserregern. Seine Eigenschaften bestehen aus Erkennung von Pathogenen mittels eines Repertoire von Antigenrezeptoren, einem Gedächtnis, was eine effektivere Reaktion bei erneutem Antigenkontakt ermöglicht und der immunologischen Toleranz, um Schäden auf das gesunde, körpereigene Gewebe zu verhindern. Das Immunsystem lässt sich in eine angeborene oder unspezifische Immunabwehr und in eine adaptive oder spezifische Immunabwehr unterteilen (Harrison et al., 2009; Janeway et al., 2002).

28

1.22 Das angeborene oder unspezifische Immunsystem Phylogenetisch handelt es sich um den älteren Teil der Immunantwort. Dazu zählen die anatomischen Barrieren, die zellvermittelte Abwehr mittels Phagozytose, allgemeine entzündliche Reaktionen sowie das Komplementsystem (Harrison et al., 2009; Janeway et al., 2002).Die Erkennung von Pathogenen durch hämatopoetische und nicht hämatopoetische Zellen führt zur Aktivierung und Produktion von Komplementfaktoren sowie zur Synthese von Zytokinen und antimikrobiellen Peptiden, die als Effektormoleküle agieren. Dendritischen Zellen sind in der Lage auszureifen und Oberflächenmoleküle zu exprimieren, die wichtig für die Antigenpräsentation sind und zu einer Aktivierung der adaptiven Immunantwort führen. Die Effektorzellen des angeborenen Immunsystems sind also an der initialen Immunabwehr von Pathogenen beteiligt und spielen eine Mediatorrolle bei der Rekrutierung und Aktivierung von B- und T-Lymphozyten und somit der Induktion der spezifischen Immunabwehr. Dies findet sich ebenfalls bei der Sklerodermie (Harrison et al., 2009; Janeway et al., 2002). Bei der zirkumskripten Sklerodermie sowie bei der systemischen Sklerodermie handelt es sich um entzündlich getriggert Autoimmunerkrankungen (Takehara and Sato, 2005; Leitenberger et al., 2009). Das vermehrte Vorkommen von B- und T-Zellen im Serum wird beschrieben. Regulatorische T-Zellen spielen eine Schlüsselfunktion bei der Aufrechterhaltung der immunologischen Toleranz gegen Selbstantigene in der Peripherie (Harrison et al., 2009). Makrophagen und Monozyten gelten als die wichtigsten zellulären Vertreter des angeborenen Immunsystems. Sie phagozytieren und zerstören Mikroorganismen. Zudem setzen sie Entzündungsmediatoren wie Prostaglandine, Leukotriene oder Zytokine frei (Harrison et al.2009). Zytokine sind Botenstoffe, die sowohl bei der angeborenen als auch der adaptiven Immunantwort von besonderer Bedeutung sind. Ihre gestörte Expression kann z.B. im Rahmen von Autoimmunerkrankungen auftreten. T-Zellen lassen sich anhand ihres Zytokinmusters in funktionelle Subpopulationen einteilen, die entweder die zellulär vermittelte Th1 Antwort oder die humoral Th2 Immunantworten steuern. An chronischen Entzündungen sind Th17 Lymphozyten, die das Interleukin 17 produzieren beteiligt (Kurzinski et al., 2011). Wie zuvor bei der systemischen Sklerodermie konnten bei der zirkumskripten Sklerodermie das Vorhandensein von Zytokinen im Serum sowie im Gewebe nachgewiesen werden. Angenommen wird eine Dysbalance zwischen den Th1, Th2 und Th17-Helferzellen. In einem frühen Stadien findet man überwiegend Th1 29

und Th17-Helferzellen (zelluläre unspezifische, angeborene Immunantwort), im fibrotischen Spätstadium sind Th2 Zellen (erworbenes Immunsystem) dominant (Kurzinski et al., 2011). 1.23 Das adaptive Immunsystem Das adaptive Immunsystem ist der phylogenetisch jüngere Anteil der Immunabwehr. Er ist gekennzeichnet ist durch eine Antigen-spezifische Antwort auf Pathogene. Gedächtniszellen ermöglichen bei erneutem Kontakt mit dem gleichen Antigen eine schnellere und stärkere Immunantwort. Es vermittelt sowohl die zelluläre sowie die humorale Immunantwort. T-Lymphozyten gewährleisten die zelluläre Immunantwort. B-Lymphozyten sind für die humorale Immunantwort verantwortlich und in der Lage, Antikörper zu bilden (Harrison et al.2009). Migrations- und Homingverhalten sorgen für eine Verteilung der immunkompetenten Zellen in den Geweben und regeln deren relativen Anteil in den einzelnen Subpopulationen. Damit die Migration der Lymphozyten gerichtet abläuft, sind in diesem Prozess Adhäsionsmoleküle wie Selektine, Integrine, verschiedene vaskuläre Liganden sowie Chemokine und ihre korrespondierenden Rezeptoren involviert. Die im Blut vorhandenen Lymphozyten müssen zunächst Kontakt zur Gefäßwand bekommen. Dieser Vorgang wird Adhäsion genannt. Anschließend erfolgt eine durch verschiedene Chemokine und deren Rezeptoren gesteuerte Wanderung des Lymphozyten durch die Gefäßwand mit anschließender Migration zum Ort der Entzündung. TLymphozyten sind Lymphozyten die im Thymus ausreifen und Träger der zellulären Immunantwort sind. Zu ihnen zählen T-Helfer-Zellen, zytotoxische T-Zellen und regulatorische T-Zellen. CD8-positive zytotoxische T-Zellen sind spezialisiert auf die Zerstörung virusinfizierter oder körperfremder Zellen. CD4-positive THelferzellen sind an der Regulation von T-/B-Zellantworten sowie der Steuerung der Monozyten-/Makrophagenaktivität beteiligt. Die von T-Zellen spezifisch exprimierten Oberflächenmoleküle sind charakteristisch für die intrathymischen Entwicklungsstadien. B-Zell-Lymphozyten entstehen im Knochenmark, exprimieren membrangebundene Immunglobuline und sind nach Antigenkontakt in der Lage, Antikörper zu bilden (Harrison et al.2009). Die Abwesenheit pathogener Autoreaktivität wird als immunologische Toleranz bezeichnet. Bei Autoimmunerkrankungen handelt es sich um einen Überbegriff von Krankheiten, deren Ursache eine überschießende Reaktion des Immunsystems gegen das körpereigene Gewebe ist. 30

2 Aktuelle Zielsetzung Gegenstand der vorliegenden Arbeit war der Nachweis und die immunhistochemische Differenzierung von Entzündungszellen im Fettgewebe, im Sinne einer septalen Pannikulitis, bei der zirkumskripten Sklerodermie. Es erfolgte hierbei die Darstellung der für eine Entzündungsreaktion wichtigen Zellpopulationen mittels immunhistochemischer Färbetechnik. Differenziert wurden T-Lymphozyten im gesamten (CD3+), T-Helferzellen (CD4+), zytotoxische/TSuppressorzellen (CD8+), Granulozyten (CD15+), B-Lymphozyten (CD20+) und Makrophagen (CD68+). Eine Abgrenzung zu anderen Pannikulitiden ist oftmals nicht eindeutig, weshalb wir als Referenzgruppe das Erythema nodosum verwendeten. In unserer Arbeit ergaben sich folgende Fragestellungen: 1. Sind im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum Entzündungszellen im Fettgewebe, im Sinne einer septalen Pannikulitis, nachweißbar? 2. Gibt es signifikante Unterschiede im Nachweis und der Differenzierung der septalen Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum? 3. Kann die septale Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie als Diagnosekriterium verwendet werden?

31

3 Material & Methoden

3.1 Einleitung Gegenstand dieser Arbeit war der Nachweis und die immunhistochemische Differenzierung von Entzündungszellen im Fettgewebe bei Patienten mit der Diagnose einer zirkumskripten Sklerodermie. Als Referenzgruppe untersuchten wir Patienten mit der Diagnose eines Erythema nodosum. In unserer experimentellen Arbeit erfolgte eine detaillierte Darstellung der Zellpopulationen mittels immunhistochemischer Färbetechnik. Nachgewiesen wurden T-Lymphozyten im gesamten (CD3+), T-Helferzellen (CD4+), zytotoxische/TSuppressorzellen (CD8+), Granulozyten (CD15+), B-Lymphozyten (CD20+) und Makrophagen (CD68+).

3.2 Das Patientenkollektiv Das untersuchte Kollektiv setzte sich aus Patienten, die entweder mit der Verdachtsdiagnose einer zirkumskripten Sklerodermie oder zur Therapieeskalation bei bereits bestehender Diagnose in der Kollagenoseambulanz der Klinik für Dermatologie, Allergologie und Venerologie der Ruhr Universität Bochum im St. Josef- Krankenhaus in Bochum vorstellig wurden, zusammen. Für die vorliegende Arbeit wurden Hautbiopsien von insgesamt 112 Patienten untersucht, die sich im Zeitraum von 2000 bis 2007 mit der klinischen und histopathologisch gesicherten Diagnose einer zirkumskripten Sklerodermie in ambulanter oder stationärer Behandlung befanden. Zwei Drittel der Patienten waren Frauen. Die Geburtsjahrgänge lagen zwischen 1926 und 1994. Die HE- gefärbten Präparate wurden lichtmikroskopisch auf das Vorliegen einer septalen Pannikulitis durch einen erfahrenen Histopathologen hin nachuntersucht. In dieser Färbung zeigte sich das für die Pannikulitis spezifische entzündliche Infiltrat blau. Es blieben insgesamt 28 Proben, die den Kriterien entsprachen. Als Vergleichsgruppen untersuchten wir die Hautbiopsien von 20 Patienten, ebenfalls aus dem Kollektiv des St. Josef Krankenhaus, mit der gesicherten Diagnose eines Ery32

thema nodosum. In der Gruppe fanden sich 85% Frauen und 15% Männer. Die Geburtsjahrgänge lagen zwischen 1940-1980.

3.3 Entnahme und Herstellung der Gewebeproben Nach ordentlicher Aufklärung des Patienten über mögliche Risiken und Komplikationen, führten wir die Hautbiopsie mittels Rundstanze (6mm) unter sterilen Kautelen in Lokalanästhesie (Scandicain 1%) durch. Bei der Entnahme wurde darauf geachtet, dass die Probe aus klinisch typischen und frischen Läsionen erfolgte. Das Gewebe sollte durch den operativen Eingriff nicht gequetscht werden.

3.3.1 Gewebevorbehandlung und Paraffineinbettung Um die entnommenen Gewebeprobe lichtmikroskopisch, histopathologisch und immunhistochemisch zu beurteilen bedurfte es einer speziellen Gewebevorbehandlung. Direkt im Anschluss an die Entnahme der Stanzbiopsien wurden diese in ein Gefäß mit 5% Formaldehyd für die Dauer von zwei Stunden bei Raumtemperatur verbracht. Die Einbettung der fixierten Präparate erfolgte mit Hilfe eines VakuumInfiltrations-Prozessors (Bayer, Leverkusen, Deutschland). Zunächst wurden die Präparate erneut für vier Stunde bei 40°C in 10% neutral gepuffertem Formalin fixiert. Anschließend wurde bei 40°C eine aufsteigende Alkoholreihe mit folgenden Stationen durchlaufen, in denen die Präparate jeweils eine Stunde verblieben. 70% Alkohol 96% Alkohol 100% Alkohol Xylol II Xylol I Abschließend wurden die Präparate jeweils eine Stunde bei 60°C in Paraffin eingebettet. Die in Paraffin gebetteten Präparate wurden nach der Aushärtung und Erkaltung mittels Mikrotom in 4μm dicke Schnitte geschnitten und im warmen Wasserbad auf Objektträger gebracht (SuperFrost Plus, Langenbrinck, Emmendingen, Deutschland). Die Objektträger für die Färbungen CD3, CD4, CD8, CD15, 33

CD20 und CD68 wurden für den Kochvorgang in der Mikrowelle zusätzlich mit Poly-L-Lysin beschichtet.

3.3.2 Entparaffinisierung und Färbevorbehandlung Vor der histologischen Routinefärbung der mit den Paraffinschnitten beschichteten Objektträger war eine Entfernung des in alle Gewebespalten eingedrungenen Paraffins (Einbettmittel) notwendig. Diese Entparaffinisierung begann im Brutschrank bei 60°C für mindestens 20 Minuten. Danach folgte das Durchlaufen einer absteigenden Alkoholreihe für zweimal 10 Minuten in Xylol und für jeweils 5 Minuten in Ethanol. Xylol 1 Xylol 2 Ethanol 99% Ethanol 99% Ethanol 96% Ethanol 70% Ethanol 50% Nach einem erneuten Waschgang mit destilliertem Wasser über 5 Minuten erfolgte dann die Vorbereitung der Präparate entsprechend ihrer nun vorgesehenen Spezialfärbungen. Bei diesen speziellen immunhistochemischen Nachweismethoden musste dem eigentlichen Färbevorgang ein Kochzyklus vorgeschaltet werden. Hierfür wurden die Gewebeschnitte in ein Waschbad mit einer speziellen Pufferlösung zur Mikrowellenbehandlung gebracht (ProTaq IV, Quartett, Berlin, Deutschland). Der Kochvorgang erfolgte in einer 3-Schritt-Technik mit zweimaligem Kochen für sechs Minuten bei 600 Watt sowie einmaligen Kochen für fünf Minuten bei 180 Watt in der Mikrowelle. Anschließend wurden die Schnitte 30 Minuten bei Raumtemperatur abgekühlt und für fünf Minuten mit destilliertem Wasser gewaschen. Es folgte der Färbevorgang mit Hilfe eines Färbeautomaten für Immunhistochemie (DAKO REAL Detection System, Alkaline Phosphatase/ RED, Rabbit/ Mouse). 34

3.4 Immunhistochemische Färbung der Gewebeschnitte Die Immunhistochemie beschäftigt sich mit dem Nachweis und der präzisen Lokalisation eines spezifischen Antigens (Proteins) in Gewebeabschnitten oder Zellen (Janeway et al., 2002). Diese Methode wird seit 1950 verwendet. Eine Steigerung der Effizienz der Methode sowie der Spezifität der Reaktionen erlaubt heute den Nachweis einer Vielzahl von Antigenen an Formaldehyd-fixiertem, Paraffineingebettetem Gewebe (Böker et al. 1996). Als erster Schritt wird ein primärer, monoklonaler Antikörper eingesetzt, der sich gegen eine spezifische Sequenz von 5-10 Aminosäuren (Epitop) eines gesuchten Antigens im Gewebe bindet. In einem zweiten Schritt der Reaktion wird dann entweder eine direkte oder eine indirekte Methoden angewandt um den primären, im Gewebe gebunden Antikörper (Antikörper-Antigen-Bindung) nachzuweisen. Bei der direkten Methode koppelt man die primären Antikörper mit einem Markermolekül, um dieses dann nach der Immunreaktion im Gewebe nachweisen zu können. Bei der indirekten Methode, welche für unsere Präparate verwendet wurden, wird die Antigen-Antikörperreaktionen im Gewebe durch zusätzliche immunologische oder chemische Reaktionen sichtbar gemacht und erreichen dadurch eine Amplifikation des Nachweissignals. Als Nachweismethode für unsere immunhistochemische Färbung der Präparate wurde das DAKO REAL Detection System verwendet, welches auf der hochsensitiven Streptavidin-Biotin-Methode basiert. Als immunologische Bindungen werden verschiedene gegeneinander gerichtete Antikörper oder chemische Affinitäten wie z.B. zwischen Streptavidin und Biotin (Streptavidin-Biotin-Komplex) verwendet, um eine Verstärkung des Nachweissignals zu erreichen. An den primären Antikörper bindet der mit Biotin markierte sekundäre Antikörper. Der biotinylierte Sekundärantikörper ist multivalent, eine Reaktion mit mehreren Streptavidinmolekülen ist möglich. Konjugiert sind die Streptavidinmoleküle mit einer alkalischen Phosphatase, die eine besondere Bedeutung im sogenannten Alkaline Phosphatase Fast Red Detection Kit hat. Die Alkalische Phosphatase vermittelt als Enzym die Reaktion mit dem Farbstoff Fast Red Chromogen, der als Substrat dient und erreicht somit eine Amplifikation des Fluoreszenzsignals. 35

Praktisch wurden folgende Einzelschritte durchlaufen: Die entsprechend vorbereiteten Präparate wurden zunächst mit einer Demaskierungslösung (Target Retrival Solution) für 20 Minuten gespült und für weitere 20 Minuten in einem Wasserbad bei 96°C inkubiert. In dem DAKO Autostainer erfolgte dann die Beschichtung der Präparate mit primären, Biotin-markierten Kaninchen-Antikörper (DAKO, Hamburg) bei 25 Grad für 30 Minuten. Hierzu waren je nach Antikörper spezielle Verdünnungen nötig. Tab. 1: Verdünnungsangaben der verwendeten Antikörper Antikörper

Inkubationszeit

Verdünnung

CD3

30 Minuten

1:250

CD4

30 Minuten

1:100

CD8

30 Minuten

1:10

CD15

30 Minuten

Keine

CD20

30 Minuten

1:3000

CD68

30 Minuten

1:400

In einem weiteren Vorgang erfolgte die Zugabe des sekundären biotinylierten Maus-anti-Kaninchen-Antikörper (DAKO, Hamburg). Nach achtminütiger Inkubationszeit sowie zweiminütiger Waschung mit einem speziellen Autostainer-Puffer (DAKO, Hamburg) wurde der mit alkalischer Phosphatase konjugierte Streptavidin-Biotin-Komplex (DAKO) hinzugefügt und für 30 Minuten inkubiert. Nach einem Waschvorgang sowie der Inkubation und Zugabe eines Enhancers erfolgte die Amplifikation des Farbstoffes Fast Red Chromogen (Red permanent, DAKO, Hamburg) mit einer Inkubationszeit von 8 Minuten. Es erfolgte eine Gegenfärbung der Präparate mit Hämatoxylin zu nukleären Blaufärbung. Anschließend wurden die Präparate in Mowiol (Polyvinylalkohol, Roche Molecular Biochemicals, Mannheim) eingebettet. Als Kontrolle verwendeten wir eine Probe eines Lymphoms, welches jeweils positiv auf die oben erwähnten Marker reagiert. Für die verschiedenen Färbereihen mit den unterschiedlichen immunhistochemischen Marker verwendeten wir jeweils konsekutive Schnitte, um eine Auswertung und Zuordnung der positiven Zellen sicher zu stellen. 36

3.5 Immunhistochemische Marker 3.5.1 CD3 Das CD3 wurde im Jahre 1983 auf einem Leukozyten-Workshop etabliert. Das Antigen besteht aus 4 Polypeptidketten. Das Molekulargewicht beträgt 16-68 kDa (Mason et al., 1989; Campana et al., 1989). Der polyklonale Antikörper (DAKO, Hamburg, Deutschland) reagiert mit der intrazellulären zytoplasmatischen Domäne des CD3-Antigenrezeptor-Komplexes und ist somit hochspezifisch für T-Lymphozyten (Mason et al., 1989). Als Epitop dient die nicht-glykosylierte Epsilon Kette. Eine CD3-Ketten vermittelte Signaltransduktion (Phosphorylierung des CD3-Komplexes) ist der erste Schritt der TZellaktivierung und deutet auf eine frühe Beteiligung des T-Zellsystems hin. Außerdem kommt es bei der großen Mehrheit neoplastischer Zellen vor und gilt als wesentlicher Marker für die erste Bewertung chronischer lymphoproliferativer Störungen. Die markierten Zellen weisen eine Oberflächenfärbung und/oder eine Färbung des Zytoplasmas auf (Campana et al., 1987).

3.5.2 CD4 CD4 ist ein Glykoprotein von 55 kDa mit fünf Immunglobulin-ähnlichen externen Domänen, einer transmembranen Domäne und einer stark konservierten intrazellulären Domäne. Der Antikörper markiert Thymozyten und T-Helferzellen (Leong and Cooper, 2003). Bei der MHC-Klasse-II-beschränkten, antigeninduzierten T-Zellaktivierung wirkt CD4 als Corezeptor und verstärkt somit die Zelladhäsion. Die Expression von CD4 findet während der T-Zellentwicklung statt, auf unreifen Thymozyten fehlt dieser (Dabbs, 2006). CD4 wird in T-Helferzellen exprimiert. Ein Vorkommen wird in etwa 80–90% der reifen Thymozyten, 55–65% der reifen peripheren T-Zellen sowie Untergruppen von Suppressor- oder zytotoxischen T-Zellen beschrieben. CD4 wird zudem auf Monozyten/Makrophagen, Langerhans-Zellen und anderen dendritischen Zellen, jedoch nicht auf B-Zellen, exprimiert (Leong et al., 2003). 37

CD4 spielt eine wichtige Rolle bei der Immunphänotypisierung von reaktiven Lymphozyten und lymphoproliferativen Erkrankungen. Die markierten Zellen weisen eine Membranfärbung auf.

3.5.3 CD8 CD8 ist ein dimeres transmembranöses Glykoprotein (Molekulargewicht 68kDa) das mit dem T-Zellrezeptor auf einer T-Zelle sowie mit des MHC-Klasse1 Molekül auf einer Zielzelle interagieren und den Immun-Erkennungskomplex stabilisiert. Der monoklonale Antikörper CD8 (DAKO, Hamburg, Deutschland) ist für den spezifischen Nachweis von zytotoxischen/Suppressorzellen geeignet. Die markierten Zellen weisen eine membranöse Oberflächenfärbung auf (Kishimoto et al., 1996).

3.5.4 CD15 CD15 ist ein Kohlenhydratantigen, dass sowohl von Glykoproteinen als auch von Glykolipiden getragen wird. CD15 dient als Ligand für Selektine und könnte auch durch eine direkte Lewis-X-Interaktion an der Zelladhäsion beteiligt sein. CD15 wird hauptsächlich auf reifen Granulozyten und Monozyten, jedoch auch auf unreifen Knochenmarkszellen und auf leukämischen Zellen myelo-monozytärer Abstammung exprimiert (Kishimoto et al, 1997). Die Färbereaktion zeigt ein zytoplasmatisches und/oder membranöses Muster.

3.5.5 CD20 CD20 ist ein strukturell einzigartiges Glykoprotein (Molekulargewicht 33kDa), dass auf B-Vorläuferzellen und reifen B-Zellen exprimiert wird. In reifen Plasmazellen geht diese Expression verloren (Zhou and Tedder, 1995). CD20 wird eine wichtige Rolle im Rahmen der B-Zellregulation zugeschrieben (Tedder and Engel, 1994). Die nachgewiesen B-Zellen zeigen eine charakteristische Färbung an der zytoplasmatischen Seite der Zelloberflächenmembran.

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3.5.6 CD68 CD68 ist ein Transmembran-Glykoprotein (Molekulargewicht 110kDa) das hauptsächlich in Lysosomen lokalisiert ist. Es gehört zur Familie der LAMP Glykoproteine, die am lysosomalen Transport bzw. der Endozytose beteiligt sind. CD68 wird in zytoplasmatischen Granula stark und auf der Oberfläche von Makrophagen, Monozyten, Neutrophilen, Basophilen und NK-Zellen schwach exprimiert. Anders als viele andere CD-Leukozyten-Antigene ist das CD68-Molekül sehr heterogen und verschiedene Antikörper gegen CD68 weisen unterschiedliche zelluläre Reaktivitäten

auf.

Charakteristisch

ist

eine

diffuse

oder

granuläre-

zytoplasmatische Färbung (Kishimoto et al., 1996; Warnke et al., 1989).

3.6 Auswertung der Gewebeschnitte Die Auswertung der immunhistochemisch gefärbten Präparate erfolgte mit dem Lichtmikroskop (SM-LUX, Leitz, Wetzlar, Deutschland). Dabei wurde das Standardokular gegen ein spezielles Rasterokular ausgetauscht um die immunhistochemisch positiv rot gefärbten Zellen in Relation zu dem blau gefärbten Gesamtentzündungsinfiltrat im Fettgewebe zu bestimmen bzw. auszuzählen. Das Präparat wurde zunächst in seiner Gesamtheit bei 10-facher Vergrößerung betrachtet. Entlang der Schichtfolgen der Haut wurde die Epidermis mit dem Stratum corneum, dem Stratum granulosum, Stratum spinosum und dem Stratum basale sowie der Dermis mit dem Stratum papillare und dem Stratum reticulare dargestellt. Besondere Fokussierung galt der Subkutis mit dem dort vorkommenden Panniculum adiposum und den darin ggf. enthaltenem Entzündungsinfiltrat (Pannikulitis). Hierfür wurde das Okular auf die 400fache Vergrößerung eingestellt um die darin enthaltenen Zellen zu zählen. Durch das Okular erscheint ein gitterförmiges Raster (0,25mm x 0,25mm), was ein systematisches Auszählen der Zellen durch die virtuellen (dermalen) Felder ermöglichte. Pro Präparat legten wir drei Zählraster in einer Reihe fest. Zuerst wurden die blauen Zellen (Gesamtentzündungsinfiltrat) und anschließend die immunhistochemisch roten gefärbten Zellen einer Reihe gezählt. Als Hilfsmittel 39

verwendeten wir einen handelsüblichen Handzähler. Der Vorgang wurde für jeden speziellen immunhistochemischen Marker sowie für die beiden von uns untersuchten Krankheitsbilder durchgeführt. Kam es nach zweimaliger Kontrolle des Zählergebnisses zu Abweichungen, wurde das jeweilige Präparat durch eine zweite Person erneut begutachtet.

3.7 Auswertung und Statistik Ein prozentualer Mittelwert wurde aus der Summe der einzelnen Zählergebnisse pro dermales Feld erhoben. Dieser Vorgang wurde jeweils für CD3, CD4, CD8, CD15, CD20 und CD68 vorgenommen. Für die statistischen Auswertung verwendetet wir den Mann-Whitney-Test, einen parameterfreien Test zur Überprüfung ob die zentrale Tendenz zweier unabhängiger Stichproben, unterschiedlich ist. Die abhängige Variable ist ordinal skaliert, muss jedoch nicht normal verteilt sein. Der Mann- Whitney Test ist ein Homogenitätstest, ein Rangsummentest/Rangtest und dient zur Überprüfung der Signifikanz der Übereinstimmung zweier Verteilungen, also ob zwei unabhängige Verteilungen zu derselben Grundgesamtheit gehören. Man kann Mittelwertsunterschiede zwischen einer Experimental- (hier der septalen Pannikulitis bei der zirkumskripten Sklerodermie) und einer Kontrollgruppe (hier der septalen Pannikulitis beim Erythema nodosum) untersuchen. Die Berechnungen erfolgten mit den Statistikprogrammen SPSS 15.0 (SPSS für Windows) und STATA ver. 9. Folgende Signifikanzschranke wurde festgelegt: p< 0,05 signifikant. Mittelwert und Standardabweichung wurden mit hierfür allgemein gebräuchlichen Formeln durch das Datenverarbeitungsprogramm EXCEL (MICROSOFT) ermittelt.

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4 Ergebnisse

4.1 Auswertung der HE gefärbten Präparate 4.1.1 Auswertung bei der zirkumskripten Sklerodermie Von den insgesamt 112 durchuntersuchten Proben wiesen 28 Hautbiopsien von Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie eine septale Pannikulitis im HE gefärbten Präparat auf.

4.1.2 Auswertung beim Erythema nodosum In der Referenzgruppen (Erythema nodosum) ließ sich in allen der 20 angefertigten und HE gefärbten Proben eine septale Pannikulitis nachweisen.

4.2 Auswertung der Immunhistochemie Tab. 2: Expressionsunterschiede immunhistochemisch angefärbter Entzündungszellen im Fettgewebe bei Patienten mit einer zirkumskripten Sklerodermie (ZS) und Patienten mit einem Erythema nodosum (EN). Die Ergebnisse sind als Mittelwerte±Standardabweichung in Prozent sowie dem Median angegeben. Als signifikant wurde p< 0,05 festgelegt. Marker ZS EN p- Wert

CD3 15,04±16,7 13

CD4 negativ

CD8 10±12,5 4,5

30,6±17,6

5,4±10,7

18,3±10,9

30

0

15

< 0,002

0,0790

0,00117

CD15 negativ negativ

CD20

CD68

15,7±25,7 14±15,8 3,5

11

5,6±6,5

38,7±13,4

3

41,5

0,7697

< 0,0001

41

4.2.1 Expression von CD3 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie In unserer Arbeit zeigte sich eine positive Expression mit 15,04±16,7% des CD3Pan-Zelllymphozytenmarkers im Fettgewebe bei 17 von 28 Patienten.

Abb. 1: CD3 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

4.2.2 Expression von CD3 im Fettgewebe beim Erythema nodosum In unserer Referenzgruppe konnte ebenfalls eine positive CD3 Expression mit 30,6±17,6 verzeichnet werden.

42

Abb. 2: CD3 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

4.2.3 Vergleich der CD3 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum Bei zirkumskripten Sklerodermie zeigte sich in der statistischen Auswertung signifikant weniger CD3 positive Zellen im Fettgewebe im Vergleich zum Erythema nodosum (z= -3,030; p< 0,002).

4.2.4 Expression von CD4 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie Die Auswertung im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie ergab keinen Nachweis von CD4 positive Zellen.

43

Abb. 3: Negative CD4 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie 4.2.5 Expression von CD4 im Fettgewebe beim Erythema nodosum In der Referenzgruppe ließ sich bei 6 der 20 Proben eine CD4 Expression mit 5,4±10,7% im Fettgewebe nachweisen (Abbildung 4).

44

Abb. 4: CD4 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

4.2.6 Vergleich der CD4 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum Die statistische Auswertung ergab für p=0,0790 und verfehlte damit die statistische Signifikanz.

4.2.7 Expression von CD15 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie Im Fettgewebe konnte keine Expression von CD15 nachgewiesen werden.

45

4.2.8 Expression von CD15 im Fettgewebe beim Erythema nodosum Beim Erythema nodosum konnte keine Expression von CD15 im Fettgewebe nachgewiesen werden.

4.2.9 Expression von CD8 im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie Die Markierung mit dem CD8 Antikörper erbrachte einen positiven Nachweis mit 10±12,5% in den Präparaten.

Abb. 5: CD8 Expression im Fettgewebe bei der zirkumskripten Sklerodermie

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4.2.10 Expression von CD8 im Fettgewebe beim Erythema nodosum 19 von 20 Präparaten zeigten eine positive Expression. Für die CD8 Markierung betrug die Anzahl positiv gezählter Zellen 18,3±10,9%.

Abb. 6: CD8 Expression im Fettgewebe beim Erythema nodosum

4.2.11 Vergleich der CD8 Expression bei der zirkumskripten Sklerodermie und dem Erythema nodosum Die statistische Auswertung ergab, dass bei der zirkumskripten Sklerodermie signifikant weniger CD8 positive Zellen im Fettgewebe im Vergleich zum Erythema nodosum nachweisbar waren (p
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